Preview

Разработка и регистрация лекарственных средств

Расширенный поиск

Количественные анатомические характеристики листовых пластинок некоторых видов Crataegus L.

https://doi.org/10.33380/2305-2066-2021-10-4-138-146

Полный текст:

Аннотация

Введение. Сырье растений рода Crataegus L. (Боярышник) включено во многие Фармакопеи мира. Государственная фармакопея Российской Федерации предусматривает использование плодов и цветков боярышника. Вместе с тем, литературные данные подтверждают возможность использования в медицинских целях листьев боярышника, поскольку «листья» и «цветки с листьями» имеют фармакопейный статус во всем мире. Они рассматриваются как перспективные виды сырья боярышника для российского фармацевтического производства. Однако большинство видов остаются плохо изученными в отношении количественных микроскопических характеристик (размеры устьичного аппарата (УА) и трихом эпидермиса листовых пластинок), которые могут иметь большое значение для установления подлинности сырья.

Цель. Изучить анатомическое строение эпидермиса листовых пластинок Crataegus spp. и провести сравнительное исследование количественных диагностических признаков листовых пластинок растений боярышника из секции Sanguineae и секции Crataegus, произрастающих в разных регионах Российской Федерации.

Материалы и методы. Образцы листьев боярышника (C. sanguinea, C. maximowiczii, C. dahurica, C. rhipidophylla, C. monogyna и C. pallasii) были заготовлены в естественных местообитаниях в Западной Сибири (Кемерово) и в дендрариях ботанических садов г. Москвы и г. Ставрополя. Измерения анатомических структур проводились с помощью светового микроскопа с окулярным микрометром.

Результаты и обсуждение. Проведено сравнительное исследование морфолого-анатомического строения листовых пластинок (ЛП) на уровне видов и секции боярышника. Приведены размеры (длина и ширина) для УА, сидячих многоклеточных железок и простых одноклеточных трихом. Описана форма железок и установлено различие на уровне секции. Отмечены особенности опушения.

Заключение. Результаты количественного анатомического исследования позволили выявить характерные отличительные признаки по размерам УА и форме желёзок в зависимости от вида боярышника и на уровне секций. Таким образом, это может облегчить установление подлинности и контроль качества целого или измельченного лекарственного сырья Crataegus.

Об авторах

В. А. Сагарадзе
ФГБНУ Всероссийский научно-исследовательский институт лекарственных и ароматических растений (ВИЛАР)
Россия

Сагарадзе Валентина Андреевна

117216, Москва, улица Грина, д. 7



Е. Ю. Бабаева
ФГБНУ Всероссийский научно-исследовательский институт лекарственных и ароматических растений (ВИЛАР)
Россия

117216, Москва, улица Грина, д. 7



Е. И. Каленикова
ФГБОУ ВО Московский государственный университет имени М. В. Ломоносова (МГУ имени М. В. Ломоносова)
Россия

факультет фундаментальной медицины

119192, Москва, Ломоносовский пр., д. 27, корп. 1



Н. А. Трусов
ФГБУН Главный ботанический сад им. Н.В. Цицина, РАН
Россия

127276, Москва, Ботаническая ул., д. 4



Е. В. Пещанская
ФГБНУ Ставропольский Ботанический сад имени В.В. Скрипчинского
Россия

355028, Ставропольский край, Ставрополь, ул. Ленина, д. 478



Список литературы

1. Cicero A. F. G., Colletti A. Nutraceuticals and dietary supplements to improve quality of life and outcomes in heart failure patients. Current Pharmaceutical Design. 2017;23(8):1265–1272. DOI: 10.2174/1381612823666170124120518.

2. WHO monographs on selected medicinal plants. V. 2. Geneva: World Health Organization; 2002. 358 p.

3. Blumenthal M., Hall T., Goldberg A., Kunz T., Dinda K., Brinckmann J., Wollschlaeger B., editors. The ABC clinical guide to herbs. Austin: American Botanical Counsil; 2003. 480 p.

4. Zick S. M., Gillespie B., Aaronson K. D. The effect of Crataegus oxy-canthaspecial extract WS 1442 on clinical progression in pa-tients with mild to moderate symptoms of heart failure. Euro-pean Journal of Heart Failure. 2008;10(6):587–593. DOI: 10.1016/j.ejheart.2008.04.008.

5. Fürst R., Zirrgiebel U., Totzke F., Zahler S., Vollmar A. M., Koch E. The Crataegus extract WS® 1442 inhibits balloon catheter-induced intimal hyperplasia in the rat carotid artery by directly influen-cing PDGFR-β. Atherosclerosis. 2010;211(2):409–417. DOI: 10.1016/j.atherosclerosis.2010.04.003.

6. Holubarsch C. J. F., Colucci W. S., Eha J. Benefit-Risk Assessment of Crataegus Extract WS 1442: An Evidence-Based Review. American Journal of Cardiovascular Drugs. 2018;18(1):25–36. DOI: 10.1007/s40256-017-0249-9.

7. Ngoc P. C., Leclercq L., Rossi J.-C., Desvignes I., Hertzog J., Fabiano-Tixier A.-S., Chemat F., Schmitt-Kopplin P., Cottet H. Optimizing water-based extraction of bioactive principles of hawthorn: from experimental laboratory research to homemade preparations. Molecules. 2019;24(23):4422. DOI: 10.3390/molecules24234420.

8. Cheng F., Jiang W., Xiong X., Chen J., Xiong Yu., Li Y. Ethanol extract of chinese hawthorn (Crataegus pinnatifida) fruit reduces inflammation and oxidative stress in rats with doxorubicin-induced chronic heart failure. Medical Science Monitor. 2020;26:e926654. DOI: 10.12659/MSM.926654.

9. Cloud A., Vilcins D., McEwen B. The effect of hawthorn (Crataegus spp.) on blood pressure: a systematic review. Advances in Integra-tive Medicine. 2020;7(3):167–175. DOI: 10.1016/j.aimed.2019.09.002.

10. Wu M., Liu L., Xing Ya., Yang S., Li H., Cao Y. Roles and mechanisms of hawthorn and its extracts on atherosclerosis: a review. Frontiers in Pharmacology. 2020;11. DOI: 10.3389/fphar.2020.00118.

11. Hawthorn leaf and flower. In: European Pharmacopoeia 6.0. Strasbourg: Council of Europe; 2008. 2035–2036 p. Available at: http://www.uspbpep.com/ep60/hawthorn%20leaf%20and%20flower%201432e.pdf. Accessed: 01.04.2020.

12. Farmacopeia Brasileira. 5th ed. V. 2. Brasília: ANVISA; 2010. 836 p. (In Port.)

13. United States Pharmacopeia 33. National Formulary 28, Second Supplement, Reissue: Hawthorn Leaf and Flower. Rockville: United States Pharmacopeial Convention; 2012. 3238 p.

14. Pharmacopoeia of the People’s Republic of China 8th ed. V. 1. Chinese Pharmacopoeia Commission. Beijing: People’s Medical Publishing House; 2005. 970 p.

15. Gao P.-Y., Li L.-Z., Liu K.-C., Sun C., Sun X., Wu Y.-N., Song S.-J. Natural terpenoid glycosides with in vitro/vivo antithrombotic profiles from the leaves of Crataegus pinnatifida. RSC Advances. 2017;7(76):48466–48474. DOI: 10.1039/C7RA10768D.

16. Hu Y.-H., Peng L.-Q., Wang Q.-Y., Yang J., Dong X., Wang S.-L., Cao J., Liu F.-M. Ecofriendly microwave‐assisted reaction and extraction of bioactive compounds from hawthorn leaf. Phytochemical Analysis. 2019;30(6):710–719. DOI: 10.1002/pca.2849.

17. Shi Ya., Kong X., Yin H., Zhang W., Wang W. Effect of hawthorn leaf flavonoids in dehydroepiandrosterone-induced polycystic ovary syndrome in rats. Pathobiology. 2019;86(2–3):102–110. DOI: 10.1159/000493895.

18. Alirezalu A., Salehi P., Ahmadi N., Sonboli A., Aceto S., Maleki H. H., Ayyari M. Flavonoids profile and antioxidant activity in flowers and leaves of hawthorn species (Crataegus spp.) from different regions of Iran. International Journal of Food Properties. 2018;21(1):452–470. DOI: 10.1080/10942912.2018.1446146.

19. Lund J. A., Brown P. N., Shipley P. R. Quantification of North Ame-rican and European Crataegus flavonoids by nuclear magnetic re-sonance spectrometry. Fitoterapia. 2020;143:104537. DOI: 10.1016/j.fitote.2020.104537.

20. State Pharmacopoeia of the Russian Federation. Federal Electronic Medical Library Electronic Resource: The State Pharmacopoeia of the Russian Federation. 14th ed. V. 4. Moscow: State Pharmacopoeia of the Russian Federation; 2018. Available from: http://www.femb.ru/feml. Accessed: 01.04.2020. (In Russ.)

21. Christensen K. I. Revision of Crataegus sect. Crataegus and nothosect. Crataeguineae (Rosaceae-Maloideae) in the Old World. V. 35. Laramie: American Society of Plant Taxonomists; 1992. 199 p.

22. Ufimov R. A. Notes on the genus Crataegus L. (Rosaceae). Komarov Botanical Institute of the Russian Academy of Sciences. 2013;44:113– 125. (In Russ.)

23. Ufimov R. A., Dickinson T. A. Infrageneric nomenclature adjustments in Crataegus L. (Maleae, Rosaceae). Phytologia. 2020;102(3):177–199.

24. El-Gazzar A. The taxonomic significance of leaf morphology in Crataegus (Rosaceae). Botanische Jahrbücher für Systematik, Pflan-zengeschichte und Pflanzengeographie. 1980;101(4):457–469.

25. Christensen K. I. , Zieliński J. Notes on the genus Crataegus (Rosaceae-Pyreae) in Southern Europe, the Crimea and Wes-tern Asia. Nordic Journal of Botany. 2008;26(5–6):344–360. DOI: 10.1111/j.1756-1051.2008.00330.x.

26. Vafin R. V., Putenikhin V. P. Crataegus: Introduction and biological features. Moscow: Nauka; 2003. 224 p. (In Russ.)

27. Solov’yeva N. M., Kotelova N. V. Hawthorn, Moscow: Agropromiz-dat; 1986. 72 p. (In Russ.)

28. Zyryanova O. A ., Yaborov V. T ., Abaimov A. P ., Koike T., Sasa K., Terazawa M. Problems in the maintenance and sustainable use of forest resources in Priamurye in the Russian Far East. Eurasian Journal of Forest Research. 2005;8(1):53–64.

29. Muhametova S. V. Hawthorn species of Asian flora in the middle Volga region. Problems on Botany in Southern Siberia and Mongolia. 2013;12:129–132. (In Russ.)

30. Lobanov A. I., Kirienko M. A. Seasonal development peculiarities of the genus Crataegus L. plants in the Krasnoyarsk forest steppe conditions. Bulletin of KrasGAU 2015;2:118–123. (In Russ.)

31. Trofimova S. V . Pharmakognostic study of Redhaw Hawthorn leaves Crataegus sanguinea Pall. of flora of Bashkortostan. PhD thesis. Ufa: Bashkir State Medical University; 2014.

32. p. Available at: https://dlib.rsl.ru/viewer/01005551745. Accessed: 01.04.2020.

33. Volkova N. A. Comparative study of the petiole features of haw-thorn redhaw (Crataegus sanguinea Pall.) and hawthorn white-thorn (Crataegus monogyna Jacq.). In: The II-nd Interuniversity scientific-practical conference "Pharmaceutical botany: modernity and prospects"; 2017 Oct 7; Samara: Samara State Medical Univer-sity; 2017. 159–171 p. (In Russ.)

34. Rezanova T. A., Bakshutov S. A. Adaptive features of the leaf surface in species of the genus Crataegus L. (Rosaceae Juss.). Belgorod University Scientific bulletin. Natural Sciences. 2009;9(104),(15/2):21– 29. (In Russ.)

35. Sharipova V. Comparative analysis the structure of the leaf Crataegus korolkowii L. (Rosaceae Juss.) Common in two different environmental conditions. Journal of Novel Applied Sciences. 2019;8(2):30–34.

36. Bekbolatova E. N ., Kurbatova N. V ., Sakipova Z. B ., Ibragimo-va L. N., Ibragimova L. N., Alpysbayeva S. I., Kabdenova A. T., Kukula-Koch W., Boylan F. Macroscopic and microscopic diagnostic fea-tures of the potential herbal drug Crataegus almaatensis Pojark endemic in Kazakhstan. Iranian Journal of Pharmaceutical Sciences. 2018;14(2):39–50.

37. Tretyak A. N, Doroshkevich E. I. Prospects for the development of a microscopy atlas of medicinal plant materials. In: I-st International scientific-practical conference “Medicinal plants: biodiversity, technology, application”; 2014 June 5-6. Grodno, Belarus. Grodno: Grodno State Agrarian University; 2014. 186–189 p. (In Russ.)

38. Golubeva I. C., Potanina O. G., Sorokina A. A. Quantitative characteristics of the anatomical and diagnostic signs of sweatweed (Althaea officinalis) roots. Farmacy. 2008;3:25–26. (In Russ.)

39. Flores A. S., de Souza Costa E., Dias G. B. Foliar anatomy of Rhynchosia spp. (Leguminosae, Papilionoideae) from Roraima state, northern Brazilian Amazon. Acta Amazonica. 2019;49(1):28–35. DOI: 10.1590/1809-4392201801691.

40. Gago P., Conejero G., Martínez M. C., This P., Verdeil J. L. Compara-tive anatomy and morphology of the leaves of grenache noir and syrah grapevine cultivars. South African Journal for Enology and Viticulture. 2019;40(2):132–140. DOI: 10.21548/40-2-3031.

41. Lemos V. O . T ., Lucena E. M . P ., de Lucena E. M . P ., Bonilla O. H ., Edson-Chaves B. Ecological anatomy of Eugenia punicifolia (Kunth) DC. (Myrtaceae) in the restinga region, state of Ceará. Revista Brasileira de Fruticultura. 2019;41(6):e-503. DOI: 10.1590/0100-29452019503.

42. da Silva P. M. F., Silva E. O., de Sousa Chaves Rêgo M., de Resende Castro L. M ., Siqueira-Silva A. I . Anatomical and histochemical characterization of Dipteryx odorata and Taralea oppositifolia, two native Amazonian species. Revista Brasileira de Farmacognosia. 2019;29(4):425–433. DOI: 10.1016/j.bjp.2019.05.004.

43. Lemos V. O. T., de Lucena E. M. P., Bonilla O. H., Edson-Chaves B., Freitas M. A. Anatomia ecológica foliar de Myrcia guianensis (Aubl.) DC. na Restinga Cearense. Ciencia Florestal. 2020;30(2):307–322. DOI: 10.5902/1980509830997. (In Port.)

44. Sagaradze V. A ., Babaeva E. Y u., Ufimov R. A ., Trusov N. A ., Kalenikova E. I. Study of the variability of rutin, vitexin, hyperoside, quercetin in "Crataegi folium cum flore" of hawthorn (Crataegus L.) species from Russian flora. Journal of Applied Research on Medicinal and Aromatic Plants. 2019;15:100217. DOI: 10.1016/j.jarmap.2019.100217.

45. Miroslavov E. A. Structure and function of the epidermis of the leaf of angiosperms. Leningrad: Nauka; 1974. 120 p. (In Russ.)

46. State Pharmacopoeia of the Russian Federation. Federal Elect-ronic Medical Library Electronic Resource: The State Pharmacopoeia of the Russian Federation. 14th ed. V. 2. Moscow: State Pharmacopoeia of the Russian Federation; 2018. Available at: http://www.femb.ru/feml. Accessed: 01.04.2020.

47. Linguistics Institute of the RAS, Dictionary of the Russian language In 4 volumes, 4th ed. V. 1. Moscow: Polygraph Resources; 1999. 702 p. (In Russ.)

48. Linguistics Institute of the RAS. Dictionary of the Russian language In 4 volumes, 4th ed. V. 4. Moscow: Polygraph Resources; 1999. 797 p. (In Russ.)

49. Kiryanova V. A., Babaeva E. U. Comparison of anatomical characteristics of leaves and flowers of Crataegus and some species of Rosaceae family. Modern Phytomorphology. 2014;6:123–124.

50. Chin S.-W., Lutz S., Wen J., Potter D. The bitter and the sweet: inference of homology and evolution of leaf glands in Prunus (Rosaceae) through anatomy, micromorphology, and ancestral– character state reconstruction. International Journal of Plant Sciences. 2013;174(1):27–46. DOI: 10.1086/668219.

51. Roshchina V. V., Roshchina V. D. The excretory function of higher plants. Moscow: Nauka; 1989. 213 p. (In Russ.)

52. Beckman C. N., Mueller W. C, McHardy W. E. Localization of stored phenols in plant hairs. Physiological Plant Pathology. 1972;2(1): 69–74.

53. Kelsey R. G., Reynolds C. W., Rodriguez E. The chemistry of bio-logically active constituents secreted and stored in plant glandular trichomes. In: Rodriguez E., Healey P. L., Mehtha I., eds. Biology and Chemistry of Plant Trichomes. New York: Plenum Press; 1984. P. 187–241.

54. Feucht W., Treutter D. The role of flavan-3-ols and proanthocyanidins in plant defense. In: Inderjit K., Dakshini M. M., Foy C. L., eds. Principles and Practic in Plant Ecology. Allelochemical Interac-tions. Boca Raton: CRC Press; 1999. P. 307–338.


Дополнительные файлы

1. Графический абстракт
Тема
Тип Исследовательские инструменты
Метаданные

Для цитирования:


Сагарадзе В.А., Бабаева Е.Ю., Каленикова Е.И., Трусов Н.А., Пещанская Е.В. Количественные анатомические характеристики листовых пластинок некоторых видов Crataegus L. Разработка и регистрация лекарственных средств. 2021;10(4):138-146. https://doi.org/10.33380/2305-2066-2021-10-4-138-146

For citation:


Sagaradze V.A., Babaeva E.Yu., Kalenikova E.I., Trusov N.A., Peshchanskaya E.V. Quantitative Anatomical Characteristics of the Leaf Blades of the Several Species of Crataegus L. Drug development & registration. 2021;10(4):138-146. https://doi.org/10.33380/2305-2066-2021-10-4-138-146

Просмотров: 111


Creative Commons License
Контент доступен под лицензией Creative Commons Attribution 4.0 License.


ISSN 2305-2066 (Print)
ISSN 2658-5049 (Online)