Исследование корневищ и корней родиолы розовой методом высокоэффективной тонкослойной хроматографии
https://doi.org/10.33380/2305-2066-2022-11-3-173-179
Аннотация
Введение. В статье представлены результаты исследования с использованием метода высокоэффективной тонкослойной хроматографии (ВЭТСХ) образцов разных сортов корневищ и корней родиолы розовой, выращиваемой в питомнике лекарственных растений Санкт-Петербургского государственного химико-фармацевтического университета (СПХФУ).
Цель. Провести сравнительный анализ методом ВЭТСХ образцов подземных органов родиолы розовой, выращиваемой в питомнике лекарственных растений СПХФУ.
Материалы и методы. ВЭТСХ анализ выполняли на приборе CAMAG (Швейцария) c использованием пластин MERCK HPTLC plates silica gel 60 F 254 размером 20 × 10 см. Извлечения из сырья получали, используя ультразвуковую ванну «Сапфир – 4,0 ТТЦ» (Россия). Корневища и корни Rhodiola rosea были заготовлены в августе 2019 г. в питомнике лекарственных растений СПХФУ (Ленинградская обл., Всеволожский р-н, 38 км Приозерского шоссе).
Результаты и обсуждение. В ходе исследования из подземных органов родиолы розовой получали извлечения, используя в качестве экстрагентов спирты этиловый 70 % и метиловый. Полученные растворы изучали методом ВЭТСХ в системе растворителей этилацетат –метанол – вода – муравьиная кислота (77 : 13 : 10 : 2). После проведения сканирующей денситометрии при 254 нм было обнаружено, что разделение метанольных извлечений в данной системе растворителей осуществляется гораздо лучше, чем этанольных. Сравнивали денситограммы отдельных треков между собой для того, чтобы выявить образцы корневищ и корней родиолы розовой с большим содержанием биологически активных соединений. В результате сравнения треков 18 образцов подземных органов Rhodiola rosea (экстрагент – спирт этиловый 70 %), в числе перспективных для последующего исследования и культивирования были предложены образцы № 6 и 17.
Заключение. В результате анализа спиртовых извлечений из корневищ и корней родиолы розовой методом ВЭТСХ было установлено, что большим содержанием биологически активных соединений отличаются образцы 6 (Томск, Россия) и 17 (сортов Valla Di Aposta/Hirvos, страна происхождения – Италия/Финляндия).
Об авторах
Н. В. СкляревскаяРоссия
197376, г. Санкт-Петербург, ул. Проф. Попова, д. 14А
Ю. С. Алексеева
Россия
197376, г. Санкт-Петербург, ул. Проф. Попова, д. 14А
А. О. Понкратова
Россия
197376, г. Санкт-Петербург, ул. Проф. Попова, д. 14А
Е. В. Жохова
Россия
197376, г. Санкт-Петербург, ул. Проф. Попова, д. 14А
Список литературы
1. Куркин В. А. Родиола розовая (золотой корень): стандартизация и создание лекарственных препаратов: монография. Самара: ООО «Офорт»; ФГБОУ ВО СамГМУ Минздрава России. 2020. 240 с.
2. Буданцев А. Л., ред. Семейства Actinidaceae – Malvaceae, Euphorbiaceae – Haloragaceae. В кн.: Растительные ресурсы России. Дикорастущие цветковые растения, их компонентный состав и биологическая активность. Т. 2. М.: Товарищество научных изданий КМК; 2009. С. 168–171.
3. Amsterdam J. D., Panossian A. G. Rhodiola rosea L. as a putative botanical antidepressant. Phytomedicine. 2016;23(7):770–783. DOI: 10.1016/j.phymed.2016.02.009.
4. Anghelescu I. G., Edwards D., Seifritz E., Kasper S. Stress management and the role of Rhodiola rosea: a review. International Journal of Psychiatry in Clinical Practice. 2018;22(4):242–252. DOI: 10.1080/13651501.2017.1417442.
5. Bai X. L., Deng X. L., Wu G. J., Li W. J., Jin S. Rhodiola and salidroside in the treatment of metabolic disorders. Mini-Reviews in Medicinal Chemistry. 2019; 19(19):1611‐1626. DOI: 10.2174/1389557519666190903115424.
6. Kosakowska O., Bączek K., Przybył J. L., Pióro-Jabrucka E., Czupa W., Synowiec A., Gniewosz M., Costa R., Mondello L., Węglarz Z. Antioxidant and Antibacterial Activity of Roseroot (Rhodiola rosea L.) Dry Extracts. Molecules. 2018;23(7):1767. DOI: 10.3390/molecules23071767.
7. Li Y., Pham V., Bui M., Song L., Wu C., Walia A., Uchio E., Smith-Liu F., Zi X. Rhodiola rosea L.: an herb with anti-stress, anti-aging, and immunostimulating properties for cancer chemoprevention. Current Pharmacology Reports. 2017; 3(6):384–395. DOI: 10.1007/s40495-017-0106-1.
8. Cui Q., Du R., Anantpadma M., Schafer A., Hou L., Tian J., Davey R., Cheng H., Rong L. Identification of ellagic acid from plant Rhodiola rosea L. as an Anti-Ebola Virus entry inhibitor. Viruses. 2018;10 (4):152. DOI: 10.3390/v10040152.
9. Todorova V., Ivanov K., Delattre C., Nalbantova V., Karcheva-Bahchevanska D., Ivanova S. Plant Adaptogens – History and Future Perspectives. Nutrients. 2021;13(8):2861. DOI: 10.3390/nu13082861.
10. Кукина Т. П., Щербаков Д. Н., Зыбкина А. В., Елшин И. А., Корсаков В. О., Сальникова О. И., Колосов П. В., Сандаг Ц., Каракай Д. А., Мордвинова Е. Д. Влияние экстрагента на состав липофильных компонентов экстрактов корневища Rhodiola rosea L. и активность экстрактов. Химия растительного сырья. 2021;4:307–317. DOI: 10.14258/jcprm.2021049872.
11. Куркин В. А., Рязанова Т. К. Вопросы стандартизации лекарственных препаратов родиолы розовой. Фармация и фармакология. 2021;9(3):185–194. DOI: 10.19163/2307-9266-2021-9-3-185-194.
12. Elameen А., Kosman V. M., Thomsen M., Pozharitskaya I. N., Shikov A. N. Variability of Major Phenyletanes and Phenylpropanoids in 16-Year-Old Rhodiola rosea L. Clones in Norway. Molecules. 2020;25(15):3463. DOI: 10.3390/molecules25153463.
13. Panossian A., Wikman G., Sarris J. Rosenroot (Rhodiola rosea): traditional use, chemical composition, pharmacology and clinical efficacy. Phytomedicine. 2010;17(7):481–493. DOI: 10.1016/j.phymed.2010.02.002.
14. Marchev A. S., Ivanka K. Koycheva, Ina Y. Aneva, Milen I. Georgiev Authenticity and quality evaluation of different Rhodiola species and commercial products based on NMR-spectroscopy and HPLC. Phytochemical Analysis. 2020;31(6):756–769. DOI: 10.1002/pca.2940.
15. Понкратова А. О., Уэйли А. К., Лужанин В. Г., Жохова Е. В. Использование метода высокоэффективной тонкослойной хроматографии для обнаружения фармакологически активных вторичных метаболитов в водянике черной Empetrum nigrum L. Разработка и регистрация лекарственных средств. 2021;10(4):129–137. DOI: 10.33380/2305-2066-2021-10-4(1)-129-137.
16. Cañigueral S., Frommenwiler D., Reich E., Vila R. High performance thin-layer chromatography (HPTLC) in the quality control of herbal products. Recent Advances in Pharmaceutical Sciences. 2018;8:119–136.
17. Dimpfel W., Schombert L., Panossian A. G. Assessing the Quality and Potential Efficacy of Commercial Extracts of Rhodiola rosea L. by Analyzing the Salidroside and Rosavin Content and the Electrophysiological Activity in Hippocampal Long-Term Potentiation, a Synaptic Model of Memory. Front. Pharmacol. 2018;9:425. DOI: 10.3389/fphar.2018.00425.
18. Khokhlova K., Zdoryk O. Authentication of Rhodiola rosea, Rhodiola quadrifida and Rhodiola rosea liquid extract from the Ukrainian market using HPTLC chromatographic profiles. Natural Product Research. 2020;34(19):2842–2846. DOI: 10.1080/14786419.2019.1591398.
Дополнительные файлы
|
1. Графический абстракт | |
Тема | ||
Тип | Исследовательские инструменты | |
Посмотреть
(1MB)
|
Метаданные |
Рецензия
Для цитирования:
Скляревская Н.В., Алексеева Ю.С., Понкратова А.О., Жохова Е.В. Исследование корневищ и корней родиолы розовой методом высокоэффективной тонкослойной хроматографии. Разработка и регистрация лекарственных средств. 2022;11(3):173-179. https://doi.org/10.33380/2305-2066-2022-11-3-173-179
For citation:
Sklyarevskaya N.V., Alexeeva Yu.S., Ponkratova A.O., Zhokhova E.V. Research of Rhodiola rosea Rhizomes and Roots Using High Performance Thin Layer Chromatography. Drug development & registration. 2022;11(3):173-179. (In Russ.) https://doi.org/10.33380/2305-2066-2022-11-3-173-179