Preview

Разработка и регистрация лекарственных средств

Расширенный поиск

Современные аспекты наружного применения и перспективы использования секретома мезенхимальных стволовых клеток (обзор)

https://doi.org/10.33380/2305-2066-2024-13-2-1727

Аннотация

Введение. Cекретом мезенхимальных стволовых клеток (СМСК) находит широкое применение в практической медицине. Он используется за счет своих иммунномодулирующих и регенеративных свойств в лечении аутоиммунных, иммуноопосредованных, а также некоторых других заболеваний благодаря противовоспалительному, нейропротективному и регенерирующему действию. В последние годы возрос интерес к разработке средств для наружного применения, содержащих СМСК. Подобные препараты планируется применять в лечении диабетических ран, для регенерации кожи, лечения воспалительных заболеваний, а также алопеции. Имеются множественные исследования, подтверждающие значительный потенциал для применения СМСК в дерматологии и косметологии. Целью данного обзора являлось изучение потенциала использования кондиционной среды в составе лекарственных средств для наружного применения, подходов к стандартизации СМСК в качестве фармацевтической субстанции и методов увеличения ее чрескожной доставки.

Текст. СМСК как активный фармацевтический ингредиент представляет собой прозрачную жидкость от желтого до оранжевого цвета с характерным запахом. рН готового к введению в композиции СМСК составляет от 7,0 до 7,5, что позволяет использовать его в средствах для местного и наружного применения без добавления стабилизаторов или корректоров рН. Проблемы доставки СМСК через эпидермис чаще всего решают помещением секретома в гидрогели, использованием экзосом или технологии с использованием микроигл. С 2022 года после внесения изменений на законодательном уровне были приняты меры по регистрации и внедрению в клиническую практику отечественных препаратов на основе клеточных продуктов. Однако, как показал анализ, до появления оригинальных лекарственных средств на основе СМСК пройдет еще некоторое время. На сегодняшний день в Российской Федерации производятся продукты, относящиеся к косметическим средствам и ветеринарным препаратам, а также зоокосметическим средствам.

Заключение. СМСК может быть использован в качестве субстанции для потенциального лечения широкого спектра острых и хронических заболеваний. Но несмотря на большое количество положительных результатов применения СМСК в заживлении ран у животных, а также клинических исследований по изучению влияния на регенерацию кожи, отсутствуют исследования его безопасности, эффективности и стандартизации процесса производства фармацевтической субстанции.

Об авторах

Е. О. Бахрушина
Федеральное государственное автономное образовательное учреждение высшего образования «Первый Московский государственный медицинский университет имени И. М. Сеченова» Министерства здравоохранения Российской Федерации (Сеченовский Университет)
Россия

119991, г. Москва, ул. Трубецкая, д. 8, стр. 2



И. В. Гравель
Федеральное государственное автономное образовательное учреждение высшего образования «Первый Московский государственный медицинский университет имени И. М. Сеченова» Министерства здравоохранения Российской Федерации (Сеченовский Университет)
Россия

119991, г. Москва, ул. Трубецкая, д. 8, стр. 2



О. С. Филиппова
Федеральное государственное автономное образовательное учреждение высшего образования «Первый Московский государственный медицинский университет имени И. М. Сеченова» Министерства здравоохранения Российской Федерации (Сеченовский Университет)
Россия

119991, г. Москва, ул. Трубецкая, д. 8, стр. 2



В. Н. Тычинин
Федеральное государственное автономное образовательное учреждение высшего образования «Российский национальный исследовательский медицинский университет имени Н. И. Пирогова» Министерства здравоохранения Российской Федерации (ФГАОУ ВО РНИМУ им. Н. И. Пирогова Минздрава России)
Россия

117997, г. Москва, ул. Островитянова, д. 1



А. А. Попова
Федеральное государственное автономное образовательное учреждение высшего образования «Первый Московский государственный медицинский университет имени И. М. Сеченова» Министерства здравоохранения Российской Федерации (Сеченовский Университет)
Россия

119991, г. Москва, ул. Трубецкая, д. 8, стр. 2



О. Б. Добровольский
Федеральное государственное автономное образовательное учреждение высшего образования «Первый Московский государственный медицинский университет имени И. М. Сеченова» Министерства здравоохранения Российской Федерации (Сеченовский Университет)
Россия

119991, г. Москва, ул. Трубецкая, д. 8, стр. 2



Список литературы

1. Teixeira F. G., Salgado A. J. Mesenchymal stem cells secretome: current trends and future challenges. Neural Regeneration Research. 2020;15(1):75–77. DOI: 10.4103/1673-5374.264455.

2. Madrigal M., Rao K. S., Riordan N. H. A review of therapeutic effects of mesenchymal stem cell secretions and induction of secretory modification by different culture methods. Journal of Translational Medicine. 2014;12(1):260. DOI: 10.1186/s12967-014-0260-8.

3. Patel G. K., Khan M. A., Zubair H., Srivastava S. K., Khushman M., Singh S., Singh A. P. Comparative analysis of exosome isolation methods using culture supernatant for optimum yield, purity and downstream applications. Scientific Reports. 2019;9(1):5335. DOI: 10.1038/s41598-019-41800-2.

4. Vizoso F. J., Eiro N., Cid S., Schneider J., Perez-Fernandez R. Mesenchymal stem cell secretome: toward cell-free therapeutic strategies in regenerative medicine. International Journal of Molecular Sciences. 2017;18(9):1852. DOI: 10.3390/ijms18091852.

5. Yang C.-Y., Chang P.-Y., Chen J.-Y., Wu B.-S., Yang A.-H., Lee O. K.-S. Adipose-derived mesenchymal stem cells attenuate dialysis-induced peritoneal fibrosis by modulating macrophage polarization via interleukin-6. Stem Cell Research & Therapy. 2021;12(1):193. DOI: 10.1186/s13287-021-02270-4.

6. Dominici M., Le Blanc K., Mueller I., Slaper-Cortenbach I., Marini F. C., Krause D.S., Deans R.J., Keating A., Prockop D.J., Horwitz E.M. Minimal criteria for defining multipotent mesenchymal stromal cells. The International Society for Cellular Therapy position statement. Cytotherapy. 2006;8(4):315–317. DOI: 10.1080/14653240600855905.

7. Bogatcheva N. V., Coleman M. E. Conditioned Medium of Mesenchymal Stromal Cells: A New Class of Therapeutics. Biochemistry. 2019;84(11):1701–1717. (In Russ.) DOI: 10.1134/S0006297919110129.

8. Chimenti I., Smith R. R., Li T.-S., Gerstenblith G., Messina E., Giacomello A., Marbán E. Relative roles of direct regeneration versus paracrine effects of human cardiosphere-derived cells transplanted into infarcted mice. Circulation Research. 2010;106(5):971–980. DOI: 10.1161/CIRCRESAHA.109.210682.

9. Achilli T.-M., Meyer J., Morgan J. R. Advances in the formation, use and understanding of multi-cellular spheroids. Expert Opinion on Biological Therapy. 2012;12(10):1347–1360. DOI: 10.1517/14712598.2012.707181.

10. Antoni D., Burckel H., Josset E., Noel G. Three-dimensional cell culture: a breakthrough in vivo. International Journal of Molecular Sciences. 2015;16(3):5517–5527. DOI: 10.3390/ijms16035517.

11. Egger D., Tripisciano C., Weber V., Dominici M., Kasper C. Dynamic cultivation of mesenchymal stem cell aggregates. Bioengineering (Basel). 2018;5(2):48. DOI: 10.3390/bioengineering5020048.

12. Huang S.-W., Tzeng S.-C., Chen J.-K., Sun J.-S., Lin F.-H. A dynamic hanging-drop system for mesenchymal stem cell culture. International Journal of Molecular Sciences. 2020;21(12):4298. DOI: 10.3390/ijms21124298.

13. Fuentes P., Torres M. J., Arancibia R., Aulestia F., Vergara M., Carrión F., Osses N., Altamirano C. Dynamic culture of mesenchymal stromal/stem cell spheroids and secretion of paracrine factors. Frontiers in Bioengineering and Biotechnology. 2022;10:916229. DOI: 10.3389/fbioe.2022.916229.

14. Lee B.-C., Kang K.-S. Functional enhancement strategies for immunomodulation of mesenchymal stem cells and their therapeutic application. Stem Cell Research & Therapy 2020;11(1):397. DOI: 10.1186/s13287-020-01920-3.

15. Park K.-S., Bandeira E., Shelke G. V., Lässer C., Lötvall J. Enhancement of therapeutic potential of mesenchymal stem cell-derived extracellular vesicles. Stem Cell Research & Therapy. 2019;10(1):288. DOI: 10.1186/s13287-019-1398-3.

16. Han H.-W., Asano S., Hsu S.-H. Cellular spheroids of mesenchymal stem cells and their perspectives in future healthcare. Applied Sciences. 2019;9(4):627. DOI: 10.3390/app9040627.

17. Bari E., Perteghella S., Di Silvestre D., Sorlini M., Catenacci L., Sorrenti M., Marrubini G., Rossi R., Tripodo G., Mauri P., Marazzi M., Torre M. L. Pilot production of mesenchymal stem/stromal freeze-dried secretome for cell-free regenerative nanomedicine: a validated GMP-Compliant process. Cells. 2018;7(11):190. DOI: 10.3390/cells7110190.

18. Lui P. P. Y., Leung Y. T. Practical considerations for translating mesenchymal stromal cell-derived extracellular vesicles from bench to bed. Pharmaceutics. 2022;14(8):1684. DOI: 10.3390/pharmaceutics14081684.

19. Costa L. A., Eiro N., Fraile M., Gonzalez L. O., Saá J., Garcia-Portabella P., Vega B., Schneider J., Vizoso F. J. Functional heterogeneity of mesenchymal stem cells from natural niches to culture conditions: implications for further clinical uses. Cellular and Molecular Life Sciences. 2021;78(2):447–467. DOI: 10.1007/s00018-020-03600-0.

20. Kim K. H., Kim Y.-S., Lee S., An S. The effect of three-dimensional cultured adipose tissue-derived mesenchymal stem cell–conditioned medium and the antiaging effect of cosmetic products containing the medium. Biomedical Dermatology. 2019;4(1):1. DOI: 10.1186/s41702-019-0053-z.

21. Carlomagno C., Giannasi C., Niada S., Bedoni M., Gualerzi A., Brini A. T. Raman fingerprint of extracellular vesicles and conditioned media for the reproducibility assessment of cell-free therapeutics. Frontiers in Bioengineering and Biotechnology. 2021;9:640617. DOI: 10.3389/fbioe.2021.640617.

22. Wei X., Liu F., Zhang S., Xu X., Li J., Wang Q., Cai J., Wang S. Human umbilical cord mesenchymal stem cell-derived conditioned medium promotes human endometrial cell proliferation through wnt/β-catenin signaling. BioMed Research International. 2022;2022:8796093. DOI: 10.1155/2022/8796093.

23. Habibian A., Soleimanjahi H., Hashemi S. M., Babashah S. Characterization and comparison of mesenchymal stem cell-derived exosome isolation methods using culture supernatant. Archives of Razi Institute. 2022;77(4):1383–1388. DOI: 10.22092/ARI.2021.356141.1790.

24. Wright A., Snyder O. L., Christenson L. K., He H., Weiss M. L. Effect of pre-processing storage condition of cell culture-conditioned medium on extracellular vesicles derived from human umbilical cord-derived mesenchymal stromal cells. International Journal of Molecular Sciences. 2022;23(14):7716. DOI: 10.3390/ijms23147716.

25. Casati S., Giannasi C., Minoli M., Niada S., Ravelli A., Angeli I., Mergenthaler V., Ottria R., Ciuffreda P., Orioli M., Brini A. T. Quantitative lipidomic analysis of osteosarcoma cell-drived products by UHPLC-MS/MS. Biomolecules. 2020;10(9):1302. DOI: 10.3390/biom10091302.

26. Bhat S., Amirthalingam M., Ballambat S. P., Bhupasandra Vasudev M., Gupta P. K., Singh Padya B., Mutalik S., Seetharam R. N. Novel bioactive formulation derived from the conditioned medium of mesenchymal stromal cells reduces under-eye dark circles in human volunteers. Journal of Cosmetic Dermatology. 2021;21(2):814–826. DOI: 10.1111/jocd.14145.

27. Tsuruta T., Sakai K., Watanabe J., Katagiri W., Hibi H. Dental pulp-derived stem cell conditioned medium to regenerate peripheral nerves in a novel animal model of dysphagia. PLoS One. 2018;13(12):e0208938. DOI: 10.1371/journal.pone.0208938.

28. Chouaib B., Cuisinier F., Collart-Dutilleul P.-Y. Dental stem cell-conditioned medium for tissue regeneration: optimization of production and storage. World Journal of Stem Cells. 2022;14(4):287–302. DOI: 10.4252/wjsc.v14.i4.287.

29. Riis S., Nielsen F. M., Pennisi C. P., Zachar V., Fink T. Comparative analysis of media and supplements on initiation and expansion of adipose-derived stem cells. Stem Cells Translational Medicine. 2016;5(3):314–324. DOI: 10.5966/sctm.2015-0148.

30. Hagmann S., Moradi B., Frank S., Dreher T., Kämmerer P. W., Richter W., Gotterbarm T. Different culture media affect growth characteristics, surface marker distribution and chondrogenic differentiation of human bone marrow-derived mesenchymal stromal cells. BMC Musculoskeletal Disorders. 2013;14:223. DOI: 10.1186/1471-2474-14-223.

31. Sagaradze G., Grigorieva O., Nimiritsky P., Basalova N., Kalinina N., Akopyan Z., Efimenko A. Conditioned medium from human mesenchymal stromal cells: towards the clinical translation. International Journal of Molecular Sciences. 2019;20(7):1656. DOI: 10.3390/ijms20071656.

32. Czapla J., Matuszczak S., Kulik K., Wisniewska E., Pilny E., Jarosz-Biej M., Smolarczyk R., Sirek T., Zembala M. O., Zembala M., Szala S., Cichoń T. The effect of culture media on large-scale expansion and characteristic of adipose tissue-derived mesenchymal stromal cells. Stem Cell Research & Therapy. 2019;10:235. DOI: 10.1186/s13287-019-1331-9.

33. Mendicino M., Bailey A.M., Wonnacott K., Puri R. K., Bauer S. R. MSC-based product characterization for clinical trials: an FDA perspective. Cell Stem Cell. 2014;14:141–145. DOI: 10.1016/j.stem.2014.01.013.

34. Barekzai J., Petry F., Zitzmann J., Czermak P., Salzig D. Bioprocess development for human mesenchymal stem cell therapy products. In: Martínez-Espinosa R. M., editor. New Advances on Fermentation Processes. London: IntechOpen; 2019. DOI: 10.5772/intechopen.90029.

35. Panchalingam K. M., Jung S., Rosenberg L., Behie L. A. Bioprocessing strategies for the large-scale production of human mesenchymal stem cells: a review. Stem Cell Research & Therapy. 2015;6:225. DOI: 10.1186/s13287-015-0228-5.

36. Qu C., Brohlin M., Kingham, P. J., Kelk P. Evaluation of growth, stemness, and angiogenic properties of dental pulp stem cells cultured in cGMP xeno-/serum-free medium. Cell and Tissue Research. 2020;380:93–105. DOI: 10.1007/s00441-019-03160-1.

37. Oskowitz A., McFerrin H., Gutschow M., Carter M. L., Pochampally R. Serum-deprived human multipotent mesenchymal stromal cells (MSCs) are highly angiogenic. Stem Cell Research. 2011;6(3):215–225. DOI: 10.1016/j.scr.2011.01.004.

38. Paschalidis T., Bakopoulou A., Papa P., Leyhausen G., Geurtsen W., Koidis P. Dental pulp stem cells’ secretome enhances pulp repair processes and compensates TEGDMA-induced cytotoxicity. Dental Materials. 2014;30(12):e405–e418. DOI: 10.1016/j.dental.2014.08.377.

39. Kupcova Skalnikova H. Proteomic techniques for characterization of mesenchymal stem cell secretome. Biochimie. 2013;95:2196–2211. DOI: 10.1016/j.biochi.2013.07.015.

40. Chouaib B., Haack-Sørensen M., Chaubron F., Cuisinier F., Collart-Dutilleul P.-Y. Towards the Standardization of Mesenchymal Stem Cell Secretome-Derived Product Manufacturing for Tissue Regeneration. International Journal of Molecular Sciences. 2023;24(16):12594. DOI: 10.3390/ijms241612594.

41. Kováčik A., Kopečná M., Vávrová K. Permeation enhancers in transdermal drug delivery: benefits and limitations. Expert Opinion on Drug Delivery. 2020;17(2):145–155. DOI: 10.1080/17425247.2020.1713087.

42. Zhang K., Yu L., Li F.-R., Li X., Wang Z., Zou X., Zhang C., Lv K., Zhou B., Mitragotri S., Chen M. Topical application of exosomes derived from human umbilical cord mesenchymal stem cells in combination with sponge spicules for treatment of photoaging. International Journal of Nanomedicine. 2020;15:2859–2872. DOI: 10.2147/IJN.S249751.

43. Yang D., Chen M., Sun Y., Jin Y., Lu C., Pan X., Quan G., Wu C. Microneedle-mediated transdermal drug delivery for treating diverse skin diseases. Acta Biomaterialia. 2021;121:119–133. DOI: 10.1016/j.actbio.2020.12.004.

44. Zhang X., Gan J., Fan L., Luo Z., Zhao Y. Bioinspired adaptable indwelling microneedles for treatment of diabetic ulcers. Advanced Materials. 2023;35(23):e2210903. DOI: 10.1002/adma.202210903.

45. Dabholkar N., Gorantla S., Waghule T., Rapalli V. K., Kothuru A., Goel S., Singhvi G. Biodegradable microneedles fabricated with carbohydrates and proteins: Revolutionary approach for transdermal drug delivery. International Journal of Biological Macromolecules. 2021;170:602–621. DOI: 10.1016/j.ijbiomac.2020.12.177.

46. Zhang B., Lai R. C., Sim W. K., Choo A. B. H., Lane E. B., Lim S. K. Topical application of mesenchymal stem cell exosomes alleviates the imiquimod induced psoriasis-like inflammation. International Journal of Molecular Sciences. 2021;22(2):720. DOI: 10.3390/ijms22020720.

47. Kim K. H., Kim Y.-S., Lee S., An S. The effect of three-dimensional cultured adipose tissue-derived mesenchymal stem cell–conditioned medium and the antiaging effect of cosmetic products containing the medium. Biomedical Dermatology. 2019;4:1. DOI: 10.1186/s41702-019-0053-z.

48. Kim Y.-J., Seo D. H., Lee S. H., Lee S.-H., An G.-H., Ahn H.-J., Kwon D., Seo K.-W., Kang K.-S. Conditioned media from human umbilical cord blood-derived mesenchymal stem cells stimulate rejuvenation function in human skin. Biochemistry and Biophysics Reports. 2018;16:96–102. DOI: 10.1016/j.bbrep.2018.10.007.

49. Park Y. M., Lee M., Jeon S., Hrůzová D. In vitro effects of conditioned medium from bioreactor cultured human umbilical cord-derived mesenchymal stem cells (hUC-MSCs) on skin-derived cell lines. Regenerative Therapy. 2021;18:281–291. DOI: 10.1016/j.reth.2021.08.003.

50. Zhang S., Chen L., Zhang G., Zhang B. Umbilical cord-matrix stem cells induce the functional restoration of vascular endothelial cells and enhance skin wound healing in diabetic mice via the polarized macrophages. Stem Cell Research & Therapy. 2020;11(1):39. DOI: 10.1186/s13287-020-1561-x.

51. De Gregorio C., Contador D., Díaz D., Cárcamo C., Santapau D., Lobos-Gonzalez L., Acosta C., Campero M., Carpio D., Gabriele C., Gaspari M., Aliaga-Tobar V., Maracaja-Coutinho V., Ezquer M., Ezquer F. Human adipose-derived mesenchymal stem cell-conditioned medium ameliorates polyneuropathy and foot ulceration in diabetic BKS db/db mice. Stem Cell Research & Therapy. 2020;11(1):168. DOI: 10.1186/s13287-020-01680-0.

52. Chen L., Cheng L., Wang Z., Zhang J., Mao X., Liu Z., Zhang Y., Cui W., Sun X. Conditioned medium-electrospun fiber biomaterials for skin regeneration. Bioactive Materials. 2021;6(2):361–374. DOI: 10.1016/j.bioactmat.2020.08.022.

53. He D., Zhao F., Jiang H., Kang Y., Song Y., Lin X., Shi P, Zhang T., Pang X. LOXL2 from human amniotic mesenchymal stem cells accelerates wound epithelialization by promoting differentiation and migration of keratinocytes. Aging. 2020;12(13):12960–12986. DOI: 10.18632/aging.103384.

54. Zhou H., Li X., Yin Y., He X.-T., An Y., Tian B.-M., Hong Y.-L., Wu L.-A., Chen F.-M. The proangiogenic effects of extracellular vesicles secreted by dental pulp stem cells derived from periodontally compromised teeth. Stem Cell Research & Therapy. 2020;11(1):110. DOI: 10.1186/s13287-020-01614-w.

55. Prakoeswa C. R. S, Natallya F. R., Harnindya D., Thohiroh A., Oktaviyanti R. N., Pratiwi K. D., Rubianti M. A., Yogatri B., Primasari P. I., Herwanto N., Alinda M. D., Kusumaputra B. H., Astari L., Listiawan M. Y., Agusni I., Rantam F. A. The efficacy of topical human amniotic membrane-mesenchymal stem cell-conditioned medium (hAMMSC-CM) and a mixture of topical hAMMSC-CM + vitamin C and hAMMSC-CM + vitamin E on chronic plantar ulcers in leprosy:a randomized control trial. Journal of Dermatological Treatment. 2018;29(8):835–840. DOI: 10.1080/09546634.2018.1467541.

56. Arjunan S., Gan S. U., Choolani M., Raj V., Lim J., Biswas A., Bongso A., Fong C. Y. Inhibition of growth of Asian keloid cells with human umbilical cord Wharton’s jelly stem cell-conditioned medium. Stem Cell Research & Therapy. 2020;11(1):78. DOI: 10.1186/s13287-020-01609-7.

57. Zhang Q., Liu L.-N., Yong Q., Deng J.-C., Cao W.-G. Intralesional injection of adipose-derived stem cells reduces hypertrophic scarring in a rabbit ear model. Stem Cell Research & Therapy. 2015;6(1):145. DOI: 10.1186/s13287-015-0133-y.

58. Zhou B.-R., Zhang T., Bin Jameel A. A., Xu Y., Xu Y., Guo S.-l., Wang Y., Permatasari F., Luo D. The efficacy of conditioned media of adipose-derived stem cells combined with ablative carbon dioxide fractional resurfacing for atrophic acne scars and skin rejuvenation. Journal of Cosmetic and Laser Therapy. 2016;18(3):138–148. DOI: 10.3109/14764172.2015.1114638.

59. Cooper D. R., Wang C., Patel R., Trujillo A., Patel N. A., Prather J., Gould L. J., Wu M. H. Human adipose-derived stem cell conditioned media and exosomes containing MALAT1 promote human dermal fibroblast migration and ischemic wound healing. Advances in Wound Care. 2018;7(9):299–308. DOI: 10.1089/wound.2017.0775.

60. Pu C.-M., Chen Ya.-C., Chen Yu.-C., Lee T.-L., Peng Y.-S., Chen S.-H., Yen Y.-H., Chien C.-L., Hsieh J.-H., Chen Y.-L. Interleukin-6 from adipose-derived stem cells promotes tissue repair by the increase of cell proliferation and hair follicles in ischemia/reperfusion-treated skin flaps. Mediators of Inflammation. 2019;2019:2343867. DOI: 10.1155/2019/2343867.

61. Zhou Y., Zhang X.-L., Lu S.-T., Zhang N.-Y., Zhang H.-J., Zhang J., Zhang Ju. Human adipose-derived mesenchymal stem cells-derived exosomes encapsulated in pluronic F127 hydrogel promote wound healing and regeneration. Stem Cell Research & Therapy. 2022;13(1):407. DOI: 10.1186/s13287-022-02980-3.

62. Yang J., Chen Z., Pan D., Li H., Shen J. Umbilical cord-derived mesenchymal stem cell-derived exosomes combined pluronic F127 hydrogel promote chronic diabetic wound healing and complete skin regeneration. International Journal of Nanomedicine. 2020;15:5911–5926. DOI: 10.2147/IJN.S249129.

63. Du S., Zeugolis D.I., O’Brien T. Scaffold-based delivery of mesenchymal stromal cells to diabetic wounds. Stem Cell Research & Therapy. 2022;13(1):426. DOI: 10.1186/s13287-022-03115-4.

64. Putra A., Ibrahim S., Muhar A. M., Kuntardjo N., Dirja B. T., Pasongka Z., Tunru I. S. Topical gel of mesenchymal stem cells-conditioned medium under TNF-α precondition accelerates wound closure healing in full-thickness skin defect animal model. Journal of Medicine and Life. 2022;15(2):214–221. DOI: 10.25122/jml-2019-0103.

65. Zhang B., Lai R. C., Sim W. K., Choo A. B. H., Lane E. B., Lim S. K. Topical application of mesenchymal stem cell exosomes alleviates the imiquimod induced psoriasis-like inflammation. International Journal of Molecular Sciences. 2021;22(2):720. DOI: 10.3390/ijms22020720.

66. Seetharaman R., Mahmood A., Kshatriya P., Patel D., Srivastava A. Mesenchymal stem cell conditioned media ameliorate psoriasis vulgaris: a case study. Case Reports in Dermatological Medicine. 2019;2019:8309103. DOI: 10.1155/2019/8309103.

67. Zhang Y., Yan J., Li Z., Zheng J., Sun Q. Exosomes derived from human umbilical cord mesenchymal stem cells alleviate psoriasis-like skin inflammation. Journal of Interferon & Cytokine Research. 2022;42(1):8–18. DOI: 10.1089/jir.2021.0146.

68. Park H.-S., Son H.-Y., Choi M.-H., Son Y., Kim S., Hong H.-S., Park J.-U. Adipose-derived stem cells attenuate atopic dermatitis-like skin lesions in NC/Nga mice. Experimental Dermatology. 2019;28(3):300–307. DOI: 10.1111/exd.13895.

69. Kim Y.-J., Ahn H.-J., Lee S.-H., Lee M.-H., Kang K.-S. Effects of conditioned media from human umbilical cord blood-derived mesenchymal stem cells in the skin immune response. Biomedicine & Pharmacotherapy. 2020;131:110789. DOI: 10.1016/j.biopha.2020.110789.

70. Wang W.-M., Wu C., Jin H.-Z. Exosomes in chronic inflammatory skin diseases and skin tumors. Experimental Dermatology. 2019;28(3):213–218. DOI: 10.1111/exd.13857.

71. Choi N., Kim W.-S., Oh S. H., Sung J.-H. HB-EGF Improves the hair regenerative potential of adipose-derived stem cells via ROS generation and hck phosphorylation. International Journal of Molecular Sciences. 2019;21(1):122. DOI: 10.3390/ijms21010122.

72. Park J., Jun E. K., Son D., Hong W., Jang J., Yun W., Yoon B. S., Song G., Kim I. Y., You S. Overexpression of nanog in amniotic fluid-derived mesenchymal stem cells accelerates dermal papilla cell activity and promotes hair follicle regeneration. Experimental & Molecular Medicine. 2019;51(7):1–15. DOI: 10.1038/s12276-019-0266-7.

73. Gunawardena T. N. A., Masoudian Z., Rahman M. T., Ramasamy T. S., Ramanathan A., Abu Kasim N. H. Dental derived stem cell conditioned media for hair growth stimulation. PLoS One. 2019;14(5):e0216003. DOI: 10.1371/journal.pone.0216003.

74. Oh H. A., Kwak J., Kim B. J., Jin H. J., Park W. S., Choi S. J., Oh W., Um S. Migration inhibitory factor in conditioned medium from human umbilical cord blood-derived mesenchymal stromal cells stimulates hair growth. Cells. 2020;9(6):1344. DOI: 10.3390/cells9061344.

75. Narita K., Fukuoka H., Sekiyama T., Suga H., Harii K. Sequential scalp assessment in hair regeneration therapy using an adipose-derived stem cell-conditioned medium. Dermatologic Surgery. 2020;46(6):819–825. DOI: 10.1097/DSS.0000000000002128.

76. Noverina R., Widowati W., Ayuningtyas W., Kurniawan D., Afifah E., Laksmitawati D. R., Rinendyaputri R., Rilianawati R., Faried A., Bachtiar I., Wirakusumah F. F. Growth factors profile in conditioned medium human adipose tissue-derived mesenchymal stem cells (CM-hATMSCs). Clinical Nutrition Experimental. 2019;24:34–44. DOI: 10.1016/j.yclnex.2019.01.002.

77. Zhang K., Yu L., Li F.-R., Li X., Wang Z., Zou X., Zhang C., Lv K., Zhou B., Mitragotri S., Chen M. Topical application of exosomes derived from human umbilical cord mesenchymal stem cells in combination with sponge spicules for treatment of photoaging. International Journal of Nanomedicine. 2020;15:2859–2872. DOI: 10.2147/IJN.S249751.

78. Kim Y.-J., Seo D. H., Lee S. H., Lee Su.-H., An G.-H., Ahn H.-J., Kwon D., Seo K.-W., Kang K.-S. Conditioned media from human umbilical cord blood-derived mesenchymal stem cells stimulate rejuvenation function in human skin. Biochemistry and Biophysics Reports. 2018;16:96–102. DOI: 10.1016/j.bbrep.2018.10.007.

79. Kim H. J., Jung M. S., Hur Y. K., Jung A. H. A study on clinical effectiveness of cosmetics containing human stem cell conditioned media. Biomedical Dermatology. 2020;4(1):9. DOI: 10.1186/s41702-020-0056-9.

80. Zhang K., Yu L., Li F.-R., Li X., Wang Z., Zou X., Zhang C., Lv K., Zhou B., Mitragotri S., Chen M. Topical Application of Exosomes Derived from Human Umbilical Cord Mesenchymal Stem Cells in Combination with Sponge Spicules for Treatment of Photoaging. International Journal of Nanomedicine. 2020;15:2859–2872. DOI: 10.2147/IJN.S249751.


Дополнительные файлы

1. Графический абстракт
Тема
Тип Прочее
Метаданные ▾

Рецензия

Для цитирования:


Бахрушина Е.О., Гравель И.В., Филиппова О.С., Тычинин В.Н., Попова А.А., Добровольский О.Б. Современные аспекты наружного применения и перспективы использования секретома мезенхимальных стволовых клеток (обзор). Разработка и регистрация лекарственных средств. 2024;13(2):34-47. https://doi.org/10.33380/2305-2066-2024-13-2-1727

For citation:


Bakhrushina E.O., Gravel I.V., Filippova O.S., Tychinin V.N., Popova A.A., Dobrovolsky O.B. Modern aspects of external application and prospects of using the secretome of mesenchymal stem cells (review). Drug development & registration. 2024;13(2):34-47. (In Russ.) https://doi.org/10.33380/2305-2066-2024-13-2-1727

Просмотров: 3221


Creative Commons License
Контент доступен под лицензией Creative Commons Attribution 4.0 License.


ISSN 2305-2066 (Print)
ISSN 2658-5049 (Online)