Изучение влияния ярутки полевой (Thlaspi arvense L.) на характеристики репродуктивной системы самцов крыс

Введение. Разработка новых эффективных и безопасных лекарственных растительных средств, способных оказывать положительное воздействие на репродуктивный статус, является актуальной задачей отечественной фармации. Лекарственные растения рассматриваются как средства альтернативной терапии, направленные на повышение уровня тестостерона и фертильности у мужчин. Арсенал лекарственных растений, применяемых в традиционной медицине для лечения заболеваний у мужчин, представлен в основном фитоадаптогенами, большинство из которых имеют малый ресурсный потенциал на территории России, поэтому актуальным является поиск растений с достаточной сырьевой базой и имеющих потенциал к культивированию. Ярутка полевая является перспективным лекарственным растением, так как широко используется в народной медицине как мочегонное, противовоспалительное, потогонное, антигистаминное, гемостатическое, вяжущее средство, оказывает положительное влияние на процессы сперматогенеза и широко распространена на территории нашей страны. Однако сведения о химическом составе и биологической активности Thlaspi arvense L. недостаточны, что показывает актуальность ее дальнейшего, более подробного изучения с целью обоснования возможности применения в практической медицине и решения вопросов стандартизации лекарственного растительного сырья.

Цель. Изучение влияния травы ярутки полевой (Thlaspi arvense L.) на характеристики репродуктивной системы самцов крыс.

Материалы и методы. Объектом исследования служил настой травы ярутки полевой (Thlaspi arvense L). Изучены особенности репродуктивного поведения самцов крыс после 21-дневного введения настоя травы ярутки полевой с помощью тестов, позволяющих количественно оценить выраженность половой мотивации и сексуальной активности самцов. Проведена оценка жизнеспособности сперматозоидов в эякуляте крыс, произведен подсчет общего количества сперматозоидов (ОКС, млн), дегенеративных и неподвижных форм (%). С помощью классических гистологических методов изучены морфофизиологические показатели сперматогенеза крыс контрольной и опытной групп животных. Иммуноферментным методом определена концентрация тестостерона в сыворотке крови экспериментальных групп животных.

Результаты и обсуждение. Полученные результаты позволяют сделать заключение о повышении фертильности крыс на фоне курсового введения настоя травы ярутки полевой, о чем свидетельствует увеличение содержания тестостерона в крови, улучшение показателей спермограммы и морфофизиологических характеристик сперматогенеза в семенниках крыс. Применение настоя травы ярутки полевой оказывает протекторное действие на сперматогенез. Выявлено увеличение толщины сперматогенного эпителия, диаметра поперечного сечения извитых семенных канальцев и индекса сперматогенеза по сравнению с контрольной группой животных. Показано положительное влияние ярутки полевой (Thlaspi arvense L.) на показатели половой мотивации и сексуальной активности самцов крыс.

Заключение. Ярутка полевая является перспективным лекарственным растением, так как способна оказывать положительное влияние на либидо, количество и подвижность сперматозоидов, выработку половых гормонов, сперматогенез, а также на гипофизарно-гонадную ось, что связано с содержанием в ней комплекса биологически активных веществ.

1. Андрияненков А. В. Изучение фармакологической эффективности густых экстрактов ярутки полевой и эспарцета песчаного на модели доброкачественной гиперплазии предстательной железы у крыс. Scientific Journal «ScienceRise». 2015;10(4):46–51. DOI: 10.15587/2313-8416.2015.52263.

2. Барнаулов О. Д. Фитотерапия при импотенции: обзор лекарственных растений и их композиций, применяемых для профилактики и лечения нарушений репродуктивных функций у мужчин. СПб.: Изд-во Н.-Л.; 2012. 416 с.

3. Браузи М. Тренды фармакотерапии в урологии. Инновации и обращение к прошлому. В сб.: XI конгресс Профессиональной ассоциации андрологов России. Эффективная фармакотерапия. 2016;23:32–33.

4. Галимов Ш. Н., Громенко Д. С., Юлдашев В. Л. Фархутдинов Р. Г., Галимова Э. Ф. Азбука мужского здоровья. Уфа: ДизайнПолиграфСервис; 2009. 24 с.

5. Гетманенко А. Ю., Бугаева Л. И., Спасов А. А., Лебедева С. А., Кузубова Е. А., Мальцев М. С. Исследование полового поведения и сперматогенеза у крыс-самцов с экспериментальным дефицитом магния. Вестник ВолгГМУ. 2016;4(60):20–23.

6. Губанов И. А., Киселева К. В., Новиков В. С., Тихомирова В. М. Иллюстрированный определитель растений Средней России. Том 2. Покрытосеменные (двудольные: раздельнолепестные). М.: Товарищество научных изданий КМК; 2003. 328 с.

7. Зайченко А. В., Тацкий Ю. А., Коротков В. А., Коваленко Е. Н., Андрияненков А. В., Кухтенко А. С. Морфологическая оценка простатопротекторного действия свечей с масляным экстрактом маклюры в эксперименте. Экспериментальная и клиническая урология. 2014;2:28-31.

8. Кирилюк А. А., Петрище Т. Л. Особенности влияния пищевых продуктов и их компонентов на фармакологическую активность лекарственных средств. Современные проблемы здравоохранения и медицинской статистики. 2017;1:51–64.

9. Наумов Н. П., Щеплев П. А., Полозов В. В. Роль антиоксидантов в профилактике мужского бесплодия. Андрология и генитальная хирургия. 2019;20(1):22–28. DOI: 10.17650/2070-9781-2019-20-1-22-29.

10. Павлов В. Н., Кутлияров Л. М., Хайретдинов А. В., и др. Фитотерапия и мужское здоровье. Уфа: Травы Башкирии; 2008. 32 с.

11. Полухина Т. С., Шатрова М. С., Бешенцева А. В. Ярутка полевая (Thlaspi arvence L.) – перспективный источник биологически активных веществ. В сб.: III Международной научно-практической конференции «Инновационное развитие современной науки: проблемы, закономерности, перспективы». Пенза: Наука и Просвещение (ИП Гуляев Г. Ю.). 2017. С. 270–272.

12. Сивков А. В., Синюхин В. Н., Ощепков В. Н., Разумов С. В., Медведев А. А., Чирун Н. В. Роль цитокинов в диагностике хронического простатита. Урология. 2003;6:25–28.

13. Буданцев А. Л., ред. Растительные ресурсы России: Дикорастущие цветковые растения, их компонентный состав и биологическая активность. Том 2. Семейства Actinidiaceae – Malvaceae, Euphorbiaceae – Haloragaceae. СПб; М.: Товарищество научных изданий КМК; 2009. 129 c.

14. Хабриев Р. У., ред. Руководство по экспериментальному (доклиническому) изучению новых фармакологических веществ. М.: Изд-во Медицина; 2005. 832 с.

15. Субботина С. Н., Парфёнова А. А., Юдин М. А., Быкова А. Ф. Сравнительный анализ информативности методов оценки полового поведения самцов крыс. Журнал высшей нервной деятельности им. И.П. Павлова. 2020;70(2):277–288. DOI: 10.31857/S0044467720020124.

16. Эбель Т. В., Михайлова С. И. Распространение ярутки полевой (Thlaspi arvensis L., Brassicaceae) в агроценозах Сибирского Федерального округа и с подкарантинной продукцией. Вестник КрасГАУ. 2021;1:56–61. DOI: 10.36718/1819-4036-2021-1-56-61.

17. Alahmadi B. A. Effect of Herbal Medicine on Fertility Potential in Experimental Animals – an Update Review. Materia Socio Medica. 2020;32(2):140–147. DOI: 10.5455/msm.2020.32.140-147.

18. Allen J. A., Diemer T., Janus P., Hales K. H., Hales D. B. Bacterial endotoxin lipopolysaccharide and reactive oxygen species inhibit Leydig cell steroidogenesis via perturbation of mitochondria. Endocrine. 2004;25(3):265–275. DOI: 10.1385/ENDO:25:3:265.

19. Aitken R. J. Free radicals, lipid peroxidation and sperm function. Reproduction, Fertility and Development. 1995;7(4):659–668. DOI: 10.1071/rd9950659.

20. Nguyen B. H., Hoang L., Cao T. N., Minh Q. P., Jannini E. A. Testosterone and aging male, a perspective from a developing country. The Aging Male. 2023;26(1):2223712. DOI: 10.1080/13685538.2023.2223712.

21. Bennett J. P., Gomperts B. D., Wollenweber E. Inhibitory effects of natural flavonoids on secretion from mast cells and neutrophils. Arzneimittelforschung. 1981;31(3):433–437.

22. Boroujeni S. N., Bossaghzadeh F., Malamiri F. A., Esmaeili A., Moudi E. The most important medicinal plants affecting sperm and testosterone production: a systematic review. JBRA Assisted Reproduction. 2022;26(3):522–530. DOI: 10.5935/1518-0557.20210108.

23. Brody S. A. Мужское бесплодие и окислительный стресс: роль диеты, образа жизни и пищевых добавок. Андрология и генитальная хирургия. 2014;15(3):33–41. DOI: 10.17650/2070-9781-2014-3-33-41.

24. Gebreegziabher Y., Marcos E., McKinon W., Rogers G. Sperm characteristics of endurance trained cyclists. International Journal of Sports Medicine. 2004;25(4):247–251. DOI: 10.1055/s-2004-819933.

25. Geva E., Bartoov B., Zabludovsky N., Lessing J. B., Lerner-Geva L., Amit A. The effect of antioxidant treatment on human spermatozoa and fertilization rate in an in vitro fertilization program. Fertility and Sterility. 1996;66(3):430–434. DOI: 10.1016/s0015-0282(16)58514-8.

26. Razaq S., Ibraheem M. R., Hashim S. S. Effect of Lepidium sativum aqueous crude extract in some fertility parameters in mice. International Journal of Science and Research. 2015;6:260–266. DOI: 10.21275/ART20176549.

27. Kim H. P., Son K. H., Chang H. W., Kang S. S. Anti-inflammatory plant flavonoids and cellular action mechanisms. Journal of Pharmacological Sciences. 2004;96(3):229–245. DOI: 10.1254/jphs.crj04003x.

28. Kubiak A., Wolna-Maruwka A., Niewiadomska A., Pilarska A. A. The Problem of Weed Infestation of Agricultural Plantations vs. the Assumptions of the European Biodiversity Strategy. Agronomy. 2022;12(8):1808. DOI: 10.3390/agronomy12081808.

29. Liu J., Chen M., Zhang Y., Zheng B. Analyses of the oil content, fatty acid composition, and antioxidant activity in seeds of Thlaspi arvense L. from different provenances and correlations with environmental factors. Chemical and Biological Technologies in Agriculture. 2022;9:11. DOI: 10.1186/s40538-021-00276-x.

30. Mencherini T., Cau A., Bianco G., Della Loggia R., Aquino R. P., Autore G. An extract of Apium graveolens var. dulce leaves: structure of the major constituent, apiin, and its anti-inflammatory properties. Journal of Pharmacy and Pharmacology. 2007;59(6):891–897. DOI: 10.1211/jpp.59.6.0016.

31. Mathes M., Kastrick E., Sayles H., Gustin S. How low is too low? Postwash total motile sperm count effect on pregnancy outcomes in intrauterine insemination. Human Fertility. 2023;26(5):1108–1113. DOI: 10.1080/14647273.2022.2137858.

32. Modaresi M., Messripour M., Rajaei R. Effect of cinnamon extract on the number of spermatocyte and spermatozoa cells in mice. Iranian Journal of Medicinal and Aromatic Plants Research. 2010;26(1):83–90. DOI: 10.22092/ijmapr.2010.6983.

33. Moher D., Liberati A., Tetzlaff J., Altman D. G. Preferred reporting items for systematic reviews and meta-analyses: the PRISMA statement. PLoS Medicine. 2009;6(7):e1000097. DOI: 10.1371/journal.pmed.1000097.

34. Monageng E., Offor U., Takalani N. B., Mohlala K., Opuwari C. S. A Review on the Impact of Oxidative Stress and Medicinal Plants on Leydig Cells. Antioxidants. 2023;12(8):1559. DOI: 10.3390/antiox12081559.

35. Oi Y., Imafuku M., Shishido C., Iwai K., Kominato Yu., Nishimura S. Garlic supplementation increases testicular testosterone and decreases plasma corticosterone in rats fed a high protein diet. The Journal of Nutrition. 2001;131(8):2150–2156. DOI: 10.1093/jn/131.8.2150.

36. Ralebona N., Sewani-Rusike C., Nkeh-Chungag B. Effects of ethanolic extract of Garcinia kola on sexual behaviour and sperm parameters in male Wistar rats. African Journal of Pharmacy and Pharmacology. 2012;6:1077–1082. DOI: 10.5897/AJPP11.652.

37. Kanabar R., Mazur A., Plum A., Schmied J. Correlates of testosterone change as men age. The Aging Male. 2022;25(1):29–40. DOI: 10.1080/13685538.2021.2023493.

38. Santangelo C., Varì R., Scazzocchio B., Di Benedetto R., Filesi C., Masella R. Polyphenols, intracellular signalling and inflammation. Annali dell'Istituto Superiore di Sanità. 2007;43(4):394–405.

39. Santos F. W., Graça D. L., Zeni G., Rocha J. B. T., Weis S. N., Favero A. M., Nogueira C. W. Sub-chronic administration of diphenyl diselenide potentiates cadmium-induced testicular damage in mice. Reproductive Toxicology. 2006;22(3):546–550. DOI: 10.1016/j.reprotox.2005.12.009.

40. Silván A. M., Abad M. J., Bermejo P., Villar A. Effects of compounds extracted from Santolina oblongifolia on TXB 2 release in human platelets. Inflammopharmacology. 1998;6(3):255–263. DOI: 10.1007/s10787-998-0024-2.

41. Sokolik O. P., Prozorova G. O. Current view on the problem of treating fibrocystic breast disease in terms of herbal medicine. Research Results in Pharmacology. 2022;8(2):77–85. DOI: 10.3897/rrpharmacology.8.79286.

42. Sultana S., Ahmed S., Jahangir T., Sharma S. Inhibitory effect of celery seeds extract on chemically induced hepatocarcinogenesis: modulation of cell proliferation, metabolism and altered hepatic foci development. Cancer Letters. 2005;221(1):11–20. DOI: 10.1016/j.canlet.2004.07.030.

43. Jang T. L., Schaeffer A. J. The role of cytokines in prostatitis. World Journal of Urology. 2003;21:95–99. DOI: 10.1007/s00345-003-0335-2.

44. Van Coppenolle F., Le Bourhis X., Carpentier F., Delaby G., Cousse H., Raynaud J.-P., Dupouy J.-P., Prevarskaya N. Pharmacological effects of the lipidosterolic extract of Serenoa repens (Permixon®) on rat prostate hyperplasia induced by hyperprolactinemia: Comparison with finasteride. The Prostate. 2000;43(1):49–58. DOI: 10.1002/(sici)1097-0045(20000401)43:1<49::aid-pros7>3.0.co;2-j.

45. Yahyazadeh A., Altunkaynak B. Z. Protective effects of luteolin on rat testis following exposure to 900 MHz electromagnetic field. Biotechnic & Histochemistry. 2019;94(4):298–307. DOI: 10.1080/10520295.2019.1566568.

46. Zou Y., Sun Q., Li J., Yang C., Yang J., Zhang L. Effects of E/Z isomers of lycopene on experimental prostatic hyperplasia in mice. Fitoterapia. 2014;99:211–217. DOI: 10.1016/j.fitote.2014.09.013.