Сравнительная характеристика определения сахаров различными методами в листьях крапивы двудомной

Введение. Согласно данным литературы, в листьях крапивы двудомной содержатся полисахариды и слизи, как составная часть гидрофильной фракции. Данная группа биологически активных веществ (БАВ) принимает участие в проявлении физиологической активности настоя. Традиционный гравиметрический метод определения полисахаридов в лекарственном растительном сырье (ЛРС), фармацевтических субстанциях растительного происхождения и лекарственных растительных препаратах не может дать истинной картины их содержания из-за присутствия примесей. Поэтому целесообразным является определение восстанавливающих сахаров, наиболее полно извлекающихся в водную фазу при приготовлении настоя с применением современных физико-химических методов анализа.

Цель. Целью работы являлось определение суммы полисахаридов и простых сахаров в листьях крапивы двудомной различными физикохимическими методами и их сравнительная характеристика.

Материалы и методы. Проведено сравнительное определение суммы полисахаридов и простых сахаров в листьях крапивы двудомной фармакопейными методами (пикриновым, антроновым и орциновым). Идентификацированы и количественно определены свободные и связанные простые сахара методом тонкослойной хроматографии (ТСХ). Исследован состав и содержание свободных простых сахаров методом капиллярного электрофореза (КЭ) в сырье.

Результаты и обсуждение. Установлено содержание свободных и связанных сахаров в сырье. Самое большое содержание как суммы полисахаридов и свободных простых сахаров в полисахаридном комплексе листьев крапивы двудомной, так и суммы свободных восстанавливающих простых сахаров согласно экспериментальным данным получено пикриновым способом. Содержание пентоз в изучаемом ЛРС оказалось в четыре раза меньше, что согласуется с данными литературы о преимущественном построении полисахаридов растительных объектов из сахаров класса гексоз. Полученное суммарное содержание фракции свободных сахаров в листьях, определенное методом КЭ, на порядок меньше по сравнению со спектрофотометрическими методиками. Полученные результаты количественного определения суммы свободных и связанных простых сахаров в изучаемом ЛРС согласуются с данными определения пикриновым фармакопейным методом.

Заключение. В целом, полные сведения, в зависимости от целей анализа, о составе и количественном содержании простых и связанных сахаров в полисахаридном комплексе растительных объектов возможно получить только комбинированием спектральных методов с КЭ или ТСХ.

1. Скалозубова Т. А., Марахова А. И., Сорокина А. А., Федоровский Н. Н. Полисахариды в листьях и настое крапивы двудомной. Фармация. 2012; 2: 5–7.

2. Самылина И. А., Рудакова И. П., Аладышева Ж. И., Ковалева С. В. Определение сахаров спектрофотометрическими методами. Фармация. 2009; 4: 3–5.

3. Бабешина Л. Г., Горина Я. В., Колоколова А. П. и др. Исследование полисахаридов некоторых видов рода Sphagnum L. Журнал Сибирского федерального университета. Химия. 2010; 4: 413–422.

4. Колосова О. А., Горох Т. А., Фурса Н. С. Определение свободных и связанных сахаров в подземных органах валерианы сомнительной. Разработка, исследование и маркетинг новой фармацевтической продукции»: сб. научных трудов конф. Пятигорск. 2013; 68: 56–57.

5. Корж А. П., Гурьев А. М., Белоусов М. В., Юсубов М. С., Белянин М. Л. Моносахаридный состав полисахаридного комплекса листьев мать-и-мачехи. Бюллетень сибирской медицины. 2011; 5: 62–65.

6. Оленников Д. Н., Танхаева Л. М. Методика количественного определения суммарного содержания полисахаридов в семенах льна. Химия растительного сырья. 2007; 4: 85–90.

7. Злобин А. А., Мартинсон Е. А., Овечкина И. А., Дурнев Е. А., Оводова Р. Г., Литвинец С. Г. Состав и свойства пектиновых полисахаридов зверобоя продырявленного Hypericum perforatum L. Химия растительного сырья. 2011; 1: 33–38.

8. Государственная фармакопея Российской Федерации XIII издание. М., 2015; 2: 1004. Available at: http://193.232.7.120/feml/clinical_ref/pharmacopoeia_1/HTML/

9. Государственная Фармакопея Российской Федерации XIV издание. М., 2018; 4: 7019. Available at: http://femb.ru/femb/pharmacopea.php.

10. Копытько Я. Ф., Лапинская Е. С., Сокольская Т. А. Применение, химический состав и стандартизация сырья и препаратов Urtica (обзор). Химико-фармацевтический журнал. 2011; 10: 32–40.

11. Тринеева О. В., Сливкин А. И. Определение суммы полисахаридов и простых сахаров в листьях крапивы двудомной. Вестник Воронежского государственного университета. Серия: Химия. Биология. Фармация. 2017; 1: 164–169.

12. Тринеева О. В. Теоретические и методологические подходы к стандартизации и оценке качества лекарственного растительного сырья и масляных экстрактов на его основе. Диссертация доктора фармацевтических наук. 2017: 441.

13. Комарова Н. В., Каменцев Я. С. Практическое руководство по использованию систем капиллярного электрофореза «Капель». СПб.: ООО «Веда». 2006: 212.

14. Тринеева О. В., Сафонова Е. Ф., Сливкин А. И., Назарова А. А. Пат. № 2642264. Российская Федерация. МКП Способ определения простых сахаров в тонком слое сорбента; заявитель и патентообладатель: ФГБОУ ВО «Воронежский государственный университет». – № 2016110353; заявл. 21.03.2016; опубл. 24.01.2018. Бюл. № 3: 17.