Разработка и валидационная оценка методики спектрофотометрического определения суммы ароматических соединений в плодах и эфирном масле фенхеля обыкновенного

Введение. Плоды фенхеля обладают выраженной ветрогонной и спазмолитической активностью благодаря особенности состава эфирного масла, доминирующим компонентом которого является фенилпропаноид – транс-анетол. Его содержание в эфирном масле может варьироваться в широком диапазоне. При этом в Российской фармакопее XV издания стандартизация по содержанию анетола для плодов фенхеля не предусмотрена.

Цель. Разработка и валидационная оценка спектрофотометрической методики определения суммы ароматических соединений в пересчете на анетол в эфирном масле плодов фенхеля обыкновенного.

Материал и методы. В качестве объекта исследования использовались плоды фенхеля обыкновенного (Foeniculum vulgare Mill.) производства ООО Фирма «Здоровье» 2024 года. В работе использовали спектрофотометр UNICO-2802 (Россия), весы аналитические АДВ-200М (Россия), газовый хроматограф GCMS-QP2010 Ultra (Shimadzu, Япония), совмещенный с масс-селективным детектором. При спектрофотометрическом определении навески эфирного масла и стандартного образца анетола растворяли в 95%-м спирте и снимали оптические плотности растворов при длине волны 259 нм в кюветах с толщиной слоя 10 мм. Результаты спектрофотометрической методики подтверждали с помощью газовой хроматографии.

Результаты и обсуждение. Валидация представленной методики, проведенная в соответствии с требованиями ОФС.1.1.0012 «Валидация аналитических методик» Государственной фармакопеи XV издания, показала ее специфичность, линейность, прецизионность и правильность. Результаты не отягощены систематической погрешностью. Относительное стандартное отклонение (RSD) не превышает 2,0 %. Результаты спектрофотометрического определения суммы ароматических соединений в пересчете на анетол (46,5 ± 0,7 %) коррелируют с результатами ГЖХ-анализа (48,6 ± 1,1 %).

Заключение. Разработанная методика количественного определения суммы ароматических соединений в пересчете на анетол может быть использована для стандартизации как самих плодов фенхеля обыкновенного путем введения дополнительного критерия оценки качества его эфирного масла в раздел «Количественное определение», так и эфирного масла фенхеля, используемого в качестве субстанции для изготовления лекарственных препаратов.

1. Буракба С., Марахова А. И., Станишевский Я. М., Василенко И. А., Жилкина В. Ю. Изучение потенциала фенхеля обыкновенного (Foeniculum vulgare Mill.) как ценного лекарственного растения (обзор). Разработка и регистрация лекарственных средств. 2024;13(2):59-67. DOI: 10.33380/2305-2066-2024-13-2-1617.

2. Annahazi A., Kuch B., Ridzal L., Mansouri N., Hosni I., Schemann M. Fennel Tea Has a Region-Specific Effect on the Motility of the Stomach. Neurogastroenterology & Motility. 2025;37(12):e70201. DOI: 10.1111/nmo.70201.

3. Budriesi R., Corazza I., Roncioni S., Scanferlato R., De Luca D., Marzetti C., Gotti R., Rizzardi N., Bergamini C., Micucci M., Roncarati D., Mattioli L. B. Herbal Extracts Mixed with Essential Oils: A Network Approach for Gastric and Intestinal Motility Disorders. Nutrients. 2024;16(24):4357. DOI: 10.3390/nu16244357.

4. Золотилова Е. В., Золотилова О. М. Изучение компонентного состава эфирного масла Foeniculum vulgare Mill. выращенного в Предгорье Крыма. В сб.: Пути и формы совершенствования фармацевтического образования. Актуальные вопросы разработки и исследования новых лекарственных средств. Сборник трудов 9-й Международной научно-методической конференции «Фармобразование-2023». Посвящается 25-летию создания фармацевтического факультета в Воронежском государственном университете. 28–29 сентября 2023. Воронеж: Воронежский государственный университет; 2023. С. 257–262. DOI: 10.17308/978-5-9273-3827-6-2023-257-262.

5. Kalleli F., Bettaieb Rebey I., Wannes W. A., Boughalleb F., Hammami M., Saidani Tounsi M., M’hamdi M. Chemical composition and antioxidant potential of essential oil and methanol extract from Tunisian and French fennel (Foeniculum vulgare Mill.) seeds. Journal of Food Biochemistry. 2019;43(8):e12935. DOI: 10.1111/jfbc.12935.

6. Wal A., Gupta D., Gasmi A., Khan A., Ashesh A. M., Kumar A., Kumar D. Unveiling the chemical composition, bioactive properties, and potential applications of fennel essential oil. South African Journal of Botany. 2025;185:617–630. DOI: 10.1016/j.sajb.2025.08.020.

7. Saxena S. N., Kakani R. K., Rator S. S., Meena, R. S., Vishal M. K., Sharma L. K., Agrawal D., John S., Panwar A., Singh B. Genetic Variation in Essential Oil Constituents of Fennel (Foeniculum vulgare Mill) Germplasm. Journal of Essential Oil Bearing Plants. 2016;19(4):989–999. DOI: 10.1080/0972060X.2016.1191378.

8. Ahmed A. F., Shi M., Liu C., Kang W. Comparative analysis of antioxidant activities of essential oils and extracts of fennel (Foeniculum vulgare Mill.) seeds from Egypt and China. Food Science and Human Wellness. 2019;8(1):67–72. DOI: 10.1016/j.fshw.2019.03.004.

9. Abdellaoui M., Bouhlali E. D. T., Derouich M., El-Rhaffari L. Essential oil and chemical composition of wild and cultivated fennel (Foeniculum vulgare Mill.): A comparative study. South African Journal of Botany. 2020;135:93–100. DOI: 10.1016/j.sajb.2020.09.004.

10. Булаев В. М., Ших Е. В., Сычев А. А. Безопасность и эффективность лекарственных растений. М.: Практическая медицина; 2013. 30 с.

11. Шефер Е. П., Антонова Н. П., Моргунов И. М., Прохватилова С. С., Зотова М. С. Способ определения компонентов эфирных масел в плодах аниса и фенхеля методом тонкослойной хроматографии. Ведомости Научного центра экспертизы средств медицинского применения. Регуляторные исследования и экспертиза лекарственных средств. 2023;13(3):419–425. DOI: 10.30895/1991-2919-2023-545.

12. Самылина И. А., Баева В. М., Кузнецов Р. М. Совершенствование требований к качеству лекарственного растительного сырья плоды тмина, фенхеля и аниса обыкновенного. Разработка и регистрация лекарственных средств. 2017;(3):134–143.

13. Рязанова Т. К., Куркин В. А. Актуальные вопросы стандартизации лекарственного растительного сырья и фармацевтических субстанций растительного происхождения, содержащих эфирные масла. Ведомости Научного центра экспертизы средств медицинского применения. Регуляторные исследования и экспертиза лекарственных средств. 2023;13(2):146–153. DOI: 10.30895/1991-2919-2023-495.

14. Chung T. Y., Eiserich J. P., Shibamoto T. Volatile Compounds Identified in Headspace Samples of Peanut Oil Heated under Temperatures Ranging from 50 to 200. Journal of Agricultural and Food Chemistry. 1993;41(10):1693–1697. DOI: 10.1021/jf00034a033.

15. Rao B. R. R. Biomass yield, essential oil yield and essential oil composition of rose-scented geranium (Pelargonium species) as influenced by row spacings and intercropping with cornmint (Mentha arvensis L.f. piperascens Malinv. ex Holmes). Industrial Crops and Products. 2002;16(2):133–144. DOI: 10.1016/S0926-6690(02)00038-9.

16. Chisholm M. G., Wilson M. A., Gaskey G. M. Characterization of aroma volatiles in key lime essential oils (Citrus aurantifolia Swingle). Flavour and Fragrance Journal. 2003;18(2):106–115. DOI: 10.1002/ffj.1172.

17. Stashenko E. E., Cervantes M., Combariza Y., Fuentes H., Martínez J. R. HRGC/FID and HRGC/MSD Analysis of the Secondary Metabolites Obtained by Different Extraction Methods from Lepechinia schiedeana, and in Vitro Evaluation of Its Antioxidant Activity. Journal of High Resolution Chromatography. 1999;22(6):343–349. DOI: 10.1002/(SICI)1521-4168(19990601)22:6<343::AID-JHRC343>3.0.CO;2-J.

18. Shatar S. Essential oil of Ferula ferulaoides from western Mongolia. Chemistry of Natural Compounds. 2005;41(5):607–608. DOI: 10.1007/s10600-005-0222-8.

19. Mallavarapu G. R., Rajeswara Rao B. R., Kaul P. N., Ramesh S., Bhattacharya A. K. Volatile constituents of the essential oils of the seeds and the herb of palmarosa (Cymbopogon martinii (Roxb.) Wats. var. motia Burk.). Flavour and Fragrance Journal. 1998;13(3):167–169. DOI: 10.1002/(SICI)1099-1026(199805/06)13:3<167::AID-FFJ719>3.0.CO;2-B.

20. Stashenko E. E., Martinez C. R., Martinez J. R., Shibamoto T. Catalytic Transformation of Anise (Pimpinella alzisum L.) Oil over Zeolite Y. Journal of High Resolution Chromatography. 1995;18(8):501–503. DOI: 10.1002/jhrc.1240180810.

21. Adedeji J., Hartman T. G., Rosen R. T., Ho C. T. Free and Glycosidically Bound Aroma Compounds in Hog Plum (Spondias mombins L.). Journal of Agricultural and Food Chemistry. 1991;39(8):1494–1497. DOI: 10.1021/jf00008a025.