Сравнительный анализ химического состава и фармакологической активности Myrtus communis L. и Myrtus communis var. microphylla Willk.

Введение. Мирт обыкновенный (Myrtus communis L.) широко распространен в Средиземноморском регионе и культивируется во многих странах мира, включая Российскую Федерацию. Внутри вида Myrtus communis L. выделяют несколько разновидностей. Наиболее известны такие разновидности, как мирт обыкновенный (M. communis L.) и мирт мелколистный (M. communis var. microphylla Willk.).

Цель. Сравнительный анализ компонентного состава мирта обыкновенного (Myrtus communis L.) и мелколистного (Myrtus communis var. microphylla Willk.) в извлечениях, полученных с использованием растворителей различной полярности (петролейный эфир, гексан, метанол), для выявления хемотаксономических маркеров и оценка антиагрегантной и антиоксидантной активности водных извлечений из листьев Myrtus communis L. и Myrtus communis var. microphylla Willk.

Материалы и методы. Объектами исследования служили высушенные листья M. communis и M. communis var. microphylla, собранные в 2024–2025 гг. в учебно-опытном хозяйстве (лимонарии) ГБПОУ «Уфимский лесотехнический техникум». Для исследования химического состава экстракцию проводили с использованием различных растворителей: петролейного эфира, гексана и метанола. Анализ компонентного состава выполняли методом газовой хромато-масс-спектрометрии (ГХ-МС) на хроматографе Agilent 8890GC с масс-спектрометром Agilent 5977В. Для фармакологических исследований использовали настои, полученные по фармакопейной методике. Фармакологическую активность изучали по влиянию на гемостаз (агрегация тромбоцитов, АПТВ) и оценивая их антиоксидантные свойства (хемилюминесценция на моделях генерации АФК, ПОЛ и активности макрофагов).

Результаты и обсуждение. В листьях M. communis и M. communis var. microphylla идентифицировано от 10 до 20 компонентов. Установлено, что содержание миртенилацетата характерно только для M. communis var. microphylla во всех исследованных извлечениях: в гексане (12,78 %), метаноле (5,59 %) и петролейном эфире (2,44 %). M. communis и M. communis var. microphylla содержат β-ситостерин (10–12 % в гексане), витамин Е (3–6 %) и эйкозан (6–13 %). Фармакологические исследования выявили умеренную антиагрегантную активность M. communis и M. communis var. microphylla: увеличение латентного периода на 5,2–6,5 %, снижение скорости агрегации на 8,7–10,3 %. M. communis var. microphylla проявил более выраженную антиоксидантную активность (снижение ПОЛ на 12,1–12,4 % для M. communis var. microphylla, на 6,2–10,4 % – M. communis).

Заключение. Полученные данные расширяют представления о внутривидовой вариабельности вида M. communis и могут быть использованы для разработки нормативной документации на сырье различных разновидностей мирта, а также для создания фитопрепаратов с антиагрегантными и антиоксидантными свойствами.

1. Коновалов Д. А., Бакова Е. Ю., Бакова Н. Н. Мирта обыкновенного листья: химический состав, фармакологические свойства, перспективы использования. Казань: Бук; 2025. 92 с.

2. Adham A. M., Sabah S. Sh., Mahmoud M. R., Fahel O. F. Analysis of Genetic Diversity of Myrtle (Myrtus Communis L.) by Using SSR Technique. IOP Conference Series: Earth and Environmental Science. 2021;1:012011. https://doi.org/10.1088/1755-1315/923/1/012011

3. Mir M. A. Myrtus communis leaves: source of bio-actives, traditional use, their biological properties, and prospects. Boletin Latinoamericano y del Caribe de Plantas Medicinales y Aromaticas. 2024;23(4):487–515. https://doi.org/10.37360/blacpma.24.23.4.33

4. Бакова Е. Ю., Бакова Н. Н., Поздняков Д. И., Коновалов Д. А., Оробинская В. Н. Антиоксидантные свойства и токсичность водного извлечения и сиропа мирта обыкновенного. Современная наука и инновации. 2022;40(4):108–115. https://doi.org/10.37493/2307-910X.2022.4.11

5. Al-Maharik N., Jaradat N., Al-Hajj N, Jaber S. Myrtus communis L.: essential oil chemical composition, total phenols and flavonoids contents, antimicrobial, antioxidant, anticancer, and α-amylase inhibitory activity. Chemical and Biological Technologies in Agriculture. 2023;10:41. https://doi.org/10.1186/s40538-023-00417-4

6. Al-Snafi A. E., Teibo J. O., Shaheen H. M., Akinfe O. A., Teibo T. K. A., Emieseimokumo N., Elfiky M. M., Al-Kuraishy H. M., Al-Garbeeb A. I., Alexiou A., Papadakis M., Mahana H. A. M., Younes A. M., Elbanna O. A., Qasem A. A. R., Shahin I. Y. I., Batiha G. E.-S. The therapeutic value of Myrtus communis L.: an updated review. Naunyn-Schmiedeberg’s Аrchives of Рharmacology. 2024;397:4579–4600. https://doi.org/10.1007/s00210-024-02958-3

7. Atiyah A. J., Mahmood S. J., Atiyah A. J. Effect of oral administration of Myrtus communis extract on reducing the negative impacts of feed contaminated with mycotoxins on productive performance and some blood characteristics in local male rabbits. Open Veterinary Journal. 2025;15(3):1217–1225. https://doi.org/10.5455/OVJ.2025.v15.i3.13

8. Barboucha G., Rahim N., Bramki A., Boulebd H., Andolfi A., Boulacheb K., Boulacel A., Salvatore M. M., Masi M. Comprehensive in vitro and in silico Analysis of Antimicrobial and Insecticidal Properties of Essential Oil of Myrtus communis L. from Algeria. International Journal of Molecular Sciences. 2025;26(10):4754. https://doi.org/10.3390/ijms26104754

9. Ertik O., Kadıoğlu-Yaman B., Şen A., Şener G., Yanardag R. The protective effects of Myrtus communis subsp. on ovariectomized diabetic rats’ renal and intestinal tissues: in vivo and in silico approaches. Archives of Physiology and Biochemistry. 2025;131(2):210–226. https://doi.org/10.1080/13813455.2024.2406895

10. Li D.-Y., Donadu M. G., Shue T., Dangas G., Athanasiadis A., Lan S., Wen X., Battah B., Zanetti S., Mazzarello V., Sarafianos S. G., Ferrari M., Michailidis E. Myrtus communis L. Essential Oil Exhibits Antiviral Activity against Coronaviruses. Pharmaceuticals. 2024;17(9):1189. https://doi.org/10.3390/ph17091189

11. Yang H., Li J., Wang B.-L., Yang X.-Y., Zhang Y. Discovery, synthesis, and antibacterial activity of novel myrtucommulone analogs as inhibitors of DNA gyrase and topoisomerase IV. European Journal of Medicinal Chemistry. 2025;283:117138. https://doi.org/10.1016/j.ejmech.2024.117138

12. Al-Najjar B. O., Elshibani F., Sharkasi M. A., Shintiri N. E., Naili E. E., Abdulsayid M., Abozayed R. S., Mohammed H. A. Phytochemical analysis, bioactivity, and molecular docking studies of Myrtus communis L. seeds and fruit peel extracts demonstrating antioxidant and anti-tyrosinase properties. Scientific Reports. 2025;15(1):5634. https://doi.org/10.1038/s41598-025-89401-6

13. Бакова Е. Ю., Меликов Ф. М., Коновалов Д. А., Бобкова Н. В. Анатомо-морфологическая характеристика листьев мирта обыкновенного, произрастающего в условиях южного берега Крыма. Фармация. 2021;70(2):29–35. https://doi.org/10.29296/25419218-2021-02-05

14. Ebrahimi F., Mahmoudi J., Torbati M., Karimi P., Valizadeh H. Hemostatic activity of aqueous extract of Myrtus communis L. leaf in topical formulation: In vivo and in vitro evaluations. Journal of Ethnopharmacology. 2020;249:112398. https://doi.org/10.1016/j.jep.2019.112398

15. Маслова В. Д., Куркин В. А., Рязанова Т. К. Сравнительный качественный и количественный анализ эфирных масел мирта обыкновенного и эвкалипта прутовидного. Фармация. 2025;(1):22–29. https://doi.org/10.29296/25419218-2025-01-03

16. Мамедова И. О., Мамедов Т. С. Состав эфирных масел листьев Myrtus communis L. на востоке Азербайджана. Hortus Вotanicus. 2022;17:204–215. https://doi.org/10.15393/j4.art.2022.8467

17. Черятова Ю. С. Особенности строения и формирования эфирномасличных вместилищ Myrtus communis L. Разнообразие растительного мира. 2023;2(17):5–11. https://doi.org/10.22281/2686-9713-2023-2-5-11

18. Melito S., La Bella S., Martinelli F., Cammalleri I., Tuttolomondo T., Leto C., Fadda A., Molinu M. G., Mulas M. Morphological, chemical, and genetic diversity of wild myrtle (Myrtus communis L.) populations in Sicily. Turkish Journal of Agriculture and Forestry. 2016;40(2):240–261. https://doi.org/10.3906/tar-1505-118

19. Tuberoso C. I. G., Barra A., Angioni A., Sarritzu E., Pirisi F. M. Chemical composition of volatiles in Sardinian myrtle (Myrtus communis L.) alcoholic extracts and essential oils. Journal of Agricultural and Food Chemistry. 2006;54(4):1420–1426. https://doi.org/10.1021/jf052425g

20. Yarahmadi R., Mumivand H., Ehtesham Nia A., Raji M. R., Argento S. Natural Diversity in Total Phenol, Flavonoids, Antioxidant Properties, and Essential Oil Composition of Iranian Populations of Myrtus communis L. Plants. 2024;13(24):3458. https://doi.org/10.3390/plants13243458

21. Bouzabata A., Castola V., Bighelli A., Abed L., Casanova J., Tomi F. Chemical variability of Algerian Myrtus communis L. Chemistry & Biodiversity. 2013;10(1):129–137. https://doi.org/10.1002/cbdv.201200150

22. Zayani R., BenSalem E., Khouja M., Bouhjar A., Boussaid M., Messaoud C. Optimization of Tunisian Myrtus communis L. Essential Oil Extraction by Complete Factorial Experimental Design. Metabolites. 2025;15(6):369. https://doi.org/10.3390/metabo15060369

23. Бакова Е. Ю., Палий А. Е., Бакова Н. Н., Федотова И. А. Особенности компонентного состава эфирного масла Myrtus communis L., выращиваемого в условиях Южного берега Крыма. Вопросы биологической, медицинской и фармацевтической химии. 2018;(11):30–35. https://doi.org/10.29296/25877313-2018-11-04

24. Gogoi D., Pal A., Chattopadhyay P., Paul S., Deka R. C., Mukherjee A. K. First Report of Plant-Derived β-Sitosterol with Antithrombotic, in Vivo Anticoagulant, and Thrombus-Preventing Activities in a Mouse Model. Journal of Natural Products. 2018;81(11):2521–2530. https://doi.org/10.1021/acs.jnatprod.8b00574

25. Alatawi K. A., Ravishankar D., Patra P. H., Bye A. P., Stainer A. R., Patel K., Widera D., Vaiyapuri S. 1,8-Cineole Affects Agonists-Induced Platelet Activation, Thrombus Formation and Haemostasis. Cells. 2021;10(10):2616. https://doi.org/10.3390/cells10102616

26. Tashmenov R. S., Toxanbayeva Zh. S., Janpaizova V. M., Ashirbekova G. Sh., Kaipova Zh. N. Extraction of phytin from rice-grain processing byproducts. Pharmaceutical Chemistry Journal. 2020;54(1):61–63. https://doi.org/10.1007/s11094-020-02156-4

27. Бабешина Л. Г., Кривенкова О. В., Танцура Н. В., Спиридонова А. А., Волкова А. И., Байчорова Д. А. Степень измельчения лекарственного растительного сырья как фактор экстракции, стабильности и доступности биологически активных веществ в многокомпонентных растительных сборах. Вопросы биологической, медицинской и фармацевтической химии. 2026;29(5):152–160. https://doi.org/10.29296/25877313-2026-05-16

28. Работягов В. Д., Хлыпенко Л. А., Бакова Н. Н., Машанов В. И. Аннотированный каталог видов и сортов эфиромасличных, пряно-ароматических и пищевых растений коллекции Никитского ботанического сада. Том 48. Ялта: НБС-ННЦ; 2007. 287 с.

29. Руководство по проведению доклинических исследований лекарственных средств. Часть 1. М.: Гриф и К; 2012. 944 с.

30. Файзуллина Л. Х., Карамышева Л. Ш., Якупова Л. Р., Мигранов А. Р., Сафиуллин Р. Л., Валеев Ф. А., Валиуллина З. А., Самородов А. В. Синтез и оценка антиоксидантной, антикоагуляционной и антиагрегационной активности аддуктов левоглюкозенона, содержащих метилзамещенные фенильные фрагменты. Химикофармацевтический журнал. 2024;58(6):48–53. https://doi.org/10.30906/0023-1134-2024-58-6-48-53

31. Мачнева И. А. Синергизм фитохимических веществ растительной пищевой матрицы: механизмы, функциональность. Плодоводство и виноградарство Юга России. 2025;93(3):127–142. https://doi.org/10.30679/2219-5335-2025-2-92-127-142

32. Mishra A. K., Singh R., Rawat H., Kumar V., Jagtap C., Jain A. The influence of food matrix on the stability and bioavailability of phytochemicals: A comprehensive review. Food and Humanity. 2024;2:100202. https://doi.org/10.1016/j.foohum.2023.12.010

33. Bin Sayeed M. S., Karim S. M. R., Sharmin T., Morshed M. M. Critical Analysis on Characterization, Systemic Effect, and Therapeutic Potential of Beta-Sitosterol: A Plant-Derived Orphan Phytosterol. Medicines. 2016;3(4):29. https://doi.org/10.3390/medicines3040029