Изучение аминокислотного состава сырья остролодочника волосистого (Oxytropis pilosa (L.) DC.), произрастающего на территории Саратовской области

Введение. Аминокислоты (АК) – ключевые компоненты живых организмов. Лекарственные растения – ценные источники АК, которые повышают биодоступность других метаболитов и потенцируют их фармакологическое действие. Однако аминокислотный состав многих растений, в том числе Oxytropis pilosa (L.) DC., остается неизученным.

Цель. Установление качественного и количественного состава свободных и связанных аминокислот в сырье О. pilosa, произрастающего на территории Саратовской области.

Материалы и методы. В качестве объекта исследования использовали сырье О. pilosa, заготовленное в период массового цветения на территории Саратовской области. Качественный анализ свободных АК проводили методом тонкослойной хроматографии (ТСХ) в системе «н-бутанол – ацетон – ледяная уксусная кислота – вода» (35 : 35 : 10 : 20); 2%-й спиртовой раствор нингидрина (детектор). Количественное определение суммы свободных АК выполняли спектрофотометрическим методом на спектрофотометре Shimadzu UV-1800 (Япония) при аналитической длине волны 568 нм. Методом ВЭЖХ осуществляли качественный и количественный анализ свободных и связанных АК на хроматографе Shimadzu LC-20 Prominence с детектором SPD-M20A (Япония) с автосемплером SIL-20A и системой для сбора и обработки хроматографических данных LabSolutions. Для идентификации обнаруженных соединений использовали стандартные образцы (СО) АК. Содержание АК выражали в мг/г сухого сырья. Полученные данные статистически обрабатывали с помощью MS Excel 2017.

Результаты и обсуждение. Методом ТСХ определен состав свободных АК водных извлечений из травы, цветков и листьев О. pilosa. Во всех исследуемых образцах идентифицированы 6 АК (аспарагиновая кислота, пролин, серин, треонин, валин, изолейцин). Наибольшее содержание суммы свободных АК найдено в траве О. pilosa (30,70 ± 0,39 мг/г). В результате ВЭЖХ-анализа АК в извлечении из травы после предварительного гидролиза выявлено 15 АК, среди которых лидируют аланин (66,056 ± 0,584 мг/г), 4-гидроксипролин (25,912 ± 0,278 мг/г), пролин (17,834 ± 0,168 мг/г) и гистидин (13,030 ± 0,086 мг/г).

Заключение. Впервые установлен качественный и количественный состав свободных и связанных АК в сырье О. pilosa. Общее содержание аминокислот составило 165,659 ± 0,806 мг/г, при этом незаменимых АК – 16,958 ± 0,139 мг/г.

1. Wu G. Amino acids: biochemistry and nutrition. Boca Raton: CRC press; 2021. 816 p. https://doi.org/10.1201/9781003092742

2. Petkova D., Stoyanova S., Dinkov G., Bogdanov M. G. Beyond Protein Building Blocks: A Review of Biological Roles and Therapeutic Potential of Free Amino Acids. International Journal of Molecular Sciences. 2025;26(23):11264. https://doi.org/10.3390/ijms262311264

3. Гудкова А. А., Шестакова Г. Ю., Чистякова А. С., Сливкин А. И. Аминокислотный состав Polemonium coeruleum L. Вестник Воронежского государственного университета. Серия: Химия. Биология. Фармация. 2021;3:86–92.

4. Шамилов А. А., Бубенчикова В. Н., Гарсия Е. Р. Анализ аминокислотного и элементного состава травы черноголовки разрезной (Prunella laciniata L.), произрастающей на Северном Кавказе. Вестник Воронежского государственного университета. Серия: Химия. Биология. Фармация. 2021;2:114–119.

5. Недилько О. В., Яницкая А. В. Изучение аминокислотного состава надземной и подземной частей солодки голой. Химия растительного сырья. 2020;1:251–256. https://doi.org/10.14258/jcprm.2020014678

6. Олешко Г. И., Ярыгина Т. И., Зорина Е. В., Решетникова М. Д. Разработка унифицированной методики количественного определения суммы свободных аминокислот в лекарственном растительном сырье и экстракционных препаратах. Фармация. 2011;3:14–17.

7. Холина А. Б., Козыренко М. М., Артюкова Е. В., Санданов Д. В., Андриянова Е. А. Филогенетические взаимоотношения видов Oxytropis DC. subg. Oxytropis и Phacoxytropis (Fabaceae) Азиатской России на основе анализа нуклеотидных последовательностей межгенных спейсеров хлоропластного генома. Генетика. 2016;52(8):895–909. https://doi.org/10.7868/S0016675816060060

8. Акулова З. В., Бобров Е. Г., Васильева Л. И. Васильченко И. Т., Миняева Н. А., Улле З. Г., Цвелев Н. Н., Чефранова З. В., Яковлев Г. П., под редакцией Федорова А. А. Флора европейской части СССР. Т. 6. Л: Издательство АН СССР; 1987. 254 с.

9. Еленевский А. Г., Буланый Ю. И., Радыгина В. И. Конспект флоры Саратовской области. Саратов: Наука; 2008. 232 с.

10. Amirkhanova A. S., Ustenova G. O. Review of the current status of study Oxytropis. Asian Journal of Pharmaceutical and Clinical Research. 2018;11(4):50–55. https://doi.org/10.22159/ajpcr.2018.v11i4.23656

11. Растительные ресурсы СССР: Цветковые растения, их химический состав, использование; Семейства Hydrangeaceae-Haloragaceae. Л.: Наука; 1987. 326 с.

12. Полуянов А. М., Матвиенко У. А., Соколова А. Ю., Савельева А. Е., Дурнова Н. А., Бобкова Н. В. Сравнительное изучение профиля свободных аминокислот в подземных органах нескольких видов рода Rumex на разных фазах вегетационного цикла. Разработка и регистрация лекарственных средств. 2024;13(1):120–127. https://doi.org/10.33380/2305-2066-2024-13-1-1719

13. Anumula K. R., Taylor P. B. Quantitative determination of phenyl isothiocyanate-derivatized amino sugars and amino sugar alcohols by high-performance liquid chromatography. Analytical Biochemistry. 1991;197(1):113–120. https://doi.org/10.1016/0003-2697(91)90365-Z

14. Tan Y.-Y., Wang J.-H. Li Q.-F. Content determination of free amino acids in glacial crazyweed (Oxytropis glacialis Benth ex Bge). Hubei Agricultural Sciences. 2003;1:76–78. https://doi.org/10.14088/j.cnki.issn0439-8114.2003.01.034

15. Amirhanova A. Sh., Ustenova G. O., Mombekob S. E., Turgumbayeva A. A., Eleken G K. Study of amino acid and fatty acid composition of medicinal plant raw materials Oxytropis glabra Lam. DC. Farmatsiya Kazakhstana. 2018;10:24–27. (In Kazakh)

16. Li P., Yin Y.-L., Li D., Kim S. W., Wu G. Amino acids and immune function. British Journal of Nutrition. 2007;98(2):237–252. https://doi.org/10.1017/S000711450769936X

17. Wu G., Bazer F. W., Burghardt R. C., Johnson G. A., Kim S. W., Knabe D. A., Li P., Li X., McKnight J. R., Satterfield M. C., Spencer T. E. Proline and hydroxyproline metabolism: implications for animal and human nutrition. Amino acids. 2011;40(4):1053–1063. https://doi.org/10.1007/s00726-010-0715-z

18. Wu G. Amino acids: metabolism, functions, and nutrition. Amino acids. 2009;37(1):1–17. https://doi.org/10.1007/s00726-009-0269-0

19. Mehl A. A., Damião A. O., Viana S. D., Andretta C. P. Hard-to-heal wounds: a randomised trial of an oral proline-containing supplement to aid repair. Journal of Wound Care. 2021;30(1):26–31. https://doi.org/10.12968/jowc.2021.30.1.26

20. Heidari R., Mohammadi H., Ghanbarinejad V., Ahmadi A., Ommati M. M., Niknahad H., Jamshidzadeh A., Azarpira N., Abdoli N. Proline supplementation mitigates the early stage of liver injury in bile duct ligated rats. Journal of Basic and Clinical Physiology and Pharmacology. 2018;30(1):91–101. https://doi.org/10.1515/jbcpp-2017-0221

21. Holeček M. Histidine in health and disease: metabolism, physiological importance, and use as a supplement. Nutrients. 2020;12(3):848. https://doi.org/10.3390/nu12030848

22. Ling Z.-N., Jiang Y.-F., Ru J.-N., Lu J.-H., Ding B., Wu J. Amino acid metabolism in health and disease. Signal Transduction and Targeted Therapy. 2023;8(1):345. https://doi.org/10.1038/s41392-023-01569-3

23. Meletis C. D., Barker J. E. Therapeutic uses of amino acids. Alternative & Complementary Therapies. 2005;11(1):24–28. https://doi.org/10.1089/ACT.2005.11.24

24. Zou P., Costas C., Lu R., Cameselle C., Lin S., Zhang F., Wei Z., Otero P. Exploring the mechanism of flavonoid amination and its potential biological implications from an in-vitro and in-vivo perspective. Critical Reviews in Food Science and Nutrition. 2026;66(9):1706–1726. https://doi.org/10.1080/10408398.2025.2554286